Quimica

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PRÁCTICA DE GLÚCIDOS
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Materiales:
- Disoluciones diluidas (2 g. en 100 ml.) de glucosa, maltosa, sacarosa o azúcar común y almidón.
- Reactivo de Fehling A y B.
- Lugol (solución iodada).
- Ácido clorhídrico al 50 %.
- Gradilla con tubos de ensayo, pinzas sujetatubos, pipetas y mechero.
Desarrollo de la práctica:
Se preparan tres tubos de ensayo con 2 ml. de la solución de glucosa,otros tres con la misma cantidad de la solución de maltosa, otros tres con la misma cantidad de la solución de sacarosa y otros tres con la misma cantidad de la de almidón.
En un tubo de cada tipo de glúcido se añade 1 ml. de reactivo de Fehling A y, con otra pipeta, 1 ml. de reactivo de Fehling B. Se calienta con cuidado hasta el comienzo de la ebullición. Si el glúcido presente tiene poderreductor (prueba positiva), el líquido deberá adquirir un color rojizo al formarse un precipitado de este color que se produce cuando el ión cúprico del Fehling pasa a cuproso.
En los tubos que han dado negativo en la prueba anterior se añaden 2 ml. de HCl al 50 % y se calientan suavemente. A continuación se repite la prueba del Fehling. Dar una explicación a los resultados obtenidos.
En otro tubode cada tipo de glúcido se añaden unas gotas de lugol. Si la prueba es positiva la disolución se tiñe de violeta. Anotar el resultado. Posteriormente, se calienta la disolución teñida de violeta hasta que pierda el color. Dejar enfriar el tubo bajo el grifo, esperar unos minutos y anotar lo que sucede. Explicar los resultados.
Poner en otro tubo de ensayo 2 ml. de la disolución de almidón y unacierta cantidad de saliva. Mezclarlo bien y calentar ligeramente durante poco tiempo. Añadir unas gotas de lugol y anotar los resultados. Realizar un análisis comparativo entre esta prueba y la anterior.
Completar el siguiente cuadro:
|Glúcido |Fehling |Fehling + HCl |Lugol |
|GLUCOSA |+ ó - |+ ó -|+ ó - |
|MALTOSA |+ ó - |+ ó - |+ ó - |
|SACAROSA |+ ó - |+ ó - |+ ó - |
|ALMIDÓN |+ ó - |+ ó - |+ ó - |

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EXPERIENCIAS CON LÍPIDOS
1.- Prueba de solubilidad
Colocaren un tubo de ensayo 2 ml. de aceite y añadir 2 ml. de un disolvente apolar (por ejemplo cloroformo o éter de petróleo). En otro tubo hacer lo mismo, pero añadir agua en vez de disolvente apolar. Agitar y anotar los resultados.
2.- Tinción con Sudán III
Poner 2 ml. de aceite en un tubo, añadir 2 ml. de agua y dejar reposar. Una vez formadas las dos fases, dejar caer unas gotas de Sudán III yagitar. Dejar reposar el tubo y anotar los resultados.
Colocar 2 ml. de leche en un tubo, verter 10 ml. de agua, unas gotas de Sudán III y agitar fuertemente. Observar que se tiñe todo de rosa. Si añadimos 1 ml. de HCl al 50 % y calentamos aparecerán, dependiendo del tiempo de reposo, dos o tres fases:
a) una superior, de color rosa oscuro, formada por las grasas teñidas.
b) una intermedia, conagua y lactosa disuelta.
c) una inferior, con las proteínas desnaturalizadas.
3.- Prueba de la emulsión.
Poner 2 ml. de aceite en un tubo, añadir 10 ml. de agua, agitar fuertemente, esperar unos minutos y anotar lo sucedido. Añadir después 1 ml. de una solución concentrada de jabón líquido, volver a agitar, esperar unos minutos y anotar lo sucedido.
4.- Prueba de la saponificación.
Colocar 2ml. de aceite y 2 ml. de Na OH al 20 %, hervir suavemente (de forma controlada) y agitar durante algunos minutos. Dejar reposar y aparecerán dos o tres capas:
a) Superior (puede no aparecer): aceite que no ha reaccionado.
b) Intermedia semisólida de jabón.
c) Inferior: glicerina disuelta en el agua.
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EXPERIENCIAS CON PROTEÍNAS
Desnaturalización o coagulación de proteínas
Hacer series...
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