Aguaymanto En Cosmética

EXPOALIMENTARIA PERU 2010
FORO: INVESTIGACION E INNOVACION EN
BIOCOMERCIO

“Aguaymanto para la cosmética”
Nancy Chasquibol Silva
Facultad de Ingeniería Industrial
Instituto de Investigación Científica
nchasqui@ulima.edu.pe

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INTRODUCCIÓN
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LEY N°28477

LEY QUE DECLARA AL“Aguaymanto, Physalis
peruviana” PATRIMONIO
NATURAL DE LA NACION.
22 de marzo del 2005
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“Aguaymanto” (Physalis peruviana L.)
  Nombres comunes:

Tomatito silvestre, capulí,
uchuva, uvilla, cereza de los
andes
  Quechua: yawarchunka
topotopo
  Aymara : uchupa, cuchuva
  Fruto oriundo del Perú,
descubierto en 1753 por el
científico sueco Carlos
Linneo, quienlo clasificaría
como Physalis peruviana L.
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Planta de Physalis peruviana L.

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Características
  Bayas carnosas de
 
 
 
 
 

forma globosa
Color naranja-amarillo
Diámetro 1,25 – 2,5 cm
Contiene numerosas
semillas
Sabor agridulce
Cáliz no comestible
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Lugares de cultivo

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2300 y 3000 m.s.n.m.

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Exportación peruanas del producto Aguaymanto
según principales mercados en el 2009

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Fuente: SUNAT

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Evolución de las exportaciones peruanas de
Aguaymanto según principales mercados
2005-2009

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Fuente: SUNAT

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Usos del Aguaymanto

Alpaca ensalsa de
|
aguaymanto

Pisco sour de
Aguaymanto

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Usos del Aguaymanto

Mermeladas
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Aguaymanto
deshidratado

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PROCEDIMIENTO EXPERIMENTAL
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Proceso de extracción del aceite crudo
Materia
prima


Selección


Separación


Fruta
no
apta


Lavado


Secado

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4000
rpm


Centrifugación
Residuos
sólidos


Aceite
crudo


Semillas


Calor,
40°C


“Torta”


Aceite
crudo


Agua
residual


Jugo
y
cáscaras


Prensado
por

EXPELLER

Filtración


Cáliz


Despulpado


Agua



Calor,
180°C


Vapor
de
Agua


Almacenado


17

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Aceite

Aguaymanto

Saponificación


Método

IUPAC

2432



Saponificable
Tocoferoles


Metoxilación

Método

ISO

5509:
1978


Insaponificable


Esteres

MeDlicos


C.

Capa
fina


Método

ISO

5508:
1990


Fracción

Esterólica

DerivaDzación


CROMATOGRAFIA

GASEOSA


Ácidos

Grasos

Esteroles


TrimeDlsilil


Derivados

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HPLC


Anexo
V.
Reglamento
CEE/
2568/91
del
5/9/1991


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Ácidos

Grasos
Vol.
Muestra


:


2
µL

Detector









:


FID

T°
Inyector















:


275
°C

T°
Detector














:


300
°C

Gas
portador

:


Hidrógeno

Columna
 
 
 
 
 
 
 
:
 
Capilar
Sílice
Fundida
SPB‐
 
2380

(60
 m
 longitud
 x
 0.25
 mm
 diámetro

interno
x
0.2
micras
espesor
de
fase)


|

T°
Horno













:

(inicial
165
°C
durante

15
minutos

e
 incremento
 a
 3°C/min
 hasta

200
°C)


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Esteroles

Columna
 
 
 :
 
 capilar
 HP‐5
 (25
 m
 longitud
 x
 0.25

mm
 diámetro
 interno
 x
 0.2
 micras

espesor
de
fase)


Detector



:

FID
en
régimen
isotermo
a
260°C

Gas
portador
:
Hidrógeno


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TOCOFEROLES

Vol.
Muestra
 :

20
µL:

Detector



 :

Fluorescencia

λExcitación


:290
nm

λEmisión





:
330
nm

Fase
Móvil

:


C6H14
+
C3H6OH
0.5%

Columna
 
 
 
 
 :
 Lichrosorb
 SI
 60
 
 (250mm

longitud

x

4mm
diámetro

interno)
 de
 pargculas
 de

sílice
de
5
micras

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RESULTADOS EXPERIMENTALES
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1. Ácidos grasos

Acido Oleico

C 17 H33 -CO-O- H
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Aguaymanto – 11,9%
Cártamo – 16,0%
Girasol – 19,0%
Soya
– 22,0%
Canola -- 58%
Oliva...