Bases Quimicas

CI 51I - CALIDAD DEL AGUA-MICROBIOLOGÍA. 11/09/2002

LABORATORIO 2. AGUAS SERVIDAS

GRUPO 1.

CARACTERIZACIÓN DE ORGANISMOS DE LA UNIDAD BIOLÓGICA Y EFICIENCIA DE REMOCIÓN MICROBIOLÓGICA. BIOFILTROS

Muestra 1. Afluente pH: T(agua: Hora rec.
Muestra 2. Efluente biofiltro (sed. 2ario) pH: T( agua: Hora rec.
Muestra 3. Efluente clorado pH: T° agua: Hora rec.
Muestra 4.Biofilm medio de soporte (grava)

Dosis de cloro agregado a M3. Tiempo de contacto: Cloro residual:
TRABAJO PRÁCTICO

a) Muestra 4. Observación bajo lupa y microscopio. Identificación (algas, protozoos, hongos, otros) y estimación de los organismos. (+) escaso; (++) regular; (+++) abundante.

b) Muestras 1,2,y3 : Determinación de NMP de coliformes fecales por la técnica del A-1. sg. NCh2313/23 Of. 95, INN.

Diluciones a inocular: M1: 10-3 a 10-6
M2: 10-2 a 10-5
M3: 10 a 10-2

Muestras 1, 2 y 3 : Determinación de Colifagos MS2 (demostrativo) (V. Lorca)

PRECAUCIONES: Ser cuidadoso en el manejo de las muestras y material biológico. Usar guantes y mascarilla; no sacar las muestras del recipiente plástico; usar propipeta para inocular las muestras. Lavarse bien lasmanos y desinfectar después de finalizado el trabajo. Desinfectar mesón.


INFORME


1. Introducción y objetivos del Laboratorio
2. Metodología. Fundamento de los métodos
3. Resultados del análisis microscópico indicando, tipos de organismos encontrados, su rol y el grado de tratamiento alcanzado.
4. Resultados de indicadores fecales (coliformes y fagos). Eficiencia del tratamiento;relacionar eficiencia esperada con encontrada. Comentarios sobre desinfección del efluente.
5. Comentarios sobre la concentración de cloro agregado y cloro residual en el efluente
6. Comentarios sobre factibilidad de reuso del efluente.
7. Otros comentarios personales
8. Bibliografía consultada.







CI 51I.- CALIDAD DEL AGUA-MICROBIOLOGÍA. LABORATORIO 2. 11/09/2002

GRUPO 3.CARACTERIZACIÓN DE ORGANISMOS DE LA UNIDAD BIOLÓGICA Y EFICIENCIA DE REMOCIÓN BACTERIOLÓGICA LAGUNAS DE ESTABILIZACIÓN.
Muestra 1. Afluente pH: T(agua: T°aire: Hora rec.:
Muestra 2. Efluente 2ario pH: T( agua: Hora rec.
Muestra 3. Efluente clorado pH: T(agua : Hora rec.

Dosis de cloro agregado M3. Tiempo de contacto: Cloro residual :

TRABAJO PRÁCTICO

Muestra 2. Observaciónmicroscópica, identificación de organismos y determinación cuantitativa del fitoplancton (ALGAS) expresados en organismos/L.

Muestras 1, 2 y 3: Determinación de NMP de coliformes fecales por la técnica del A-1. sg. NCh 2313/23 Of. 95, INN.


Diluciones a inocular: M1: 10-3 a 10-6
M2: 10-2 a 10-5 M3: 10 a 10-2

a) Colifagos (Demostrativo) M 1, M2 y M3. (V. Lorca).PRECAUCIONES: Ser cuidadoso en el manejo de las muestras y material biológico. Usar guantes y mascarilla; no sacar las muestras del recipiente plástico; usar propipeta para inocular las muestras. Lavarse bien las manos y desinfectar después de finalizado el trabajo. Desinfectar mesón.

INFORME

1. Introducción y objetivos del Laboratorio
2. Metodología. Fundamento de los métodos
3. Resultados delanálisis microscópico, indicando:
Tipos organismos encontrados en la laguna; relación con los parámetros físico-químicos del agua y comentarios sobre las algas y su rol en el proceso.
4. Resultados microbiológicos (CF y fagos); eficiencia de las unidades; relacionar eficiencia esperada con encontrada, sin considerar cloración.
5. En base a eficiencia bacteriológica total (sin considerarcloración), calcular el período de retención del agua en el sistema. (k : 0,7/d).
Comentarios sobre factibilidad de reuso del efluente.
Otros comentarios personales
8. Bibliografía consultada (revisar informe CEPIS, F. Yanez; Libro J. Romero).









ANEXO


ANÁLISIS MICROSCÓPICO DE FITOPLANCTON EN AGUAS


Determinación del Nº de organismos por ml


Procedimiento...