Callogenesis de chirimoya


UNIVERSIDAD RICARDO PALMA
FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS
ESCUELA ACADÉMICO PROFESIONAL DE BIOLOGÍA
ASIGNATURA: TALLER DE BIOTECNOLOGÍA VEGETAL
CICLO 2013-I


TALLER Nº1

OBTENCIÓN Y CULTIVO IN VITRODE CALLO DE Annonacherimola ¨Chirimoya¨










OBTENCIÓN Y CULTIVO IN VITRODE CALLO DE Annonacherimola ¨Chirimoya¨

1. INTRODUCCIÓN

Annonacherimolaes una fruta nativadel Perú cultivada desde épocas prehispánicas en climas secos y crece en regiones de hasta 3000 msnm, el árbol puede llegar a medir hasta 8 m, es de tronco corto y copa redondeada,el fruto es muy delicado,lo que complica su exportación y consumo.
El presente trabajo tratará de conseguir la formación del callo, el cual es un tejido cicatrical amorfo, es un cúmulo de células que están conformadasdesorganizadamente y se obtienen a partir de un determinado tejido. La formación del callo comienza con el aislamiento de órganos o tejidos diferenciados, los cuales posteriormente se desdiferencian ante la presencia de dos tipos de fitohormonas (la auxina y la citoquinina), y como medio básico se utiliza el medio de cultivo Murashige-Skoog (1962). La desdiferenciación celular se da en el mediodebido a los reguladores de crecimiento y posteriormente se forma la masa celular denominada “callo”.
Por medio de la biotecnología buscamos obtener in vitrocallos viables de Annonacherimolaen menor tiempo del que le toma a un cultivo normal,esta técnica consiste en la separación de una porción de tejido, pudiendo esta ser de hojas, tallo, raíz, etc., para formar un tejido de célulasdesdiferenciadas con la ayuda de un medio nutritivo (MS) suplementado con 2,4-D.

2. ANTECEDENTES

1. ALI et al. (2007). Evaluaron el efecto de las hormonas vegetales citokinina 6-benzylaminopurina (BAP) y la auxina conocida como Acido 1- naphthaleacetico (IAA) a diferentes concentraciones en el medio MS para la inducción del callo, y la tasa de regeneración de brotes a partir de 2 cultivos deNicotianatabacum L. “tabaco” para optimizar las condiciones de cultivo de tejidos. Los resultados demostraron que una alta concentración de auxina (2.0 mg/L) y una baja de cytokinina (0.2 mg/L) se produjo mejor la callogenesis. Esto podría ser debido principalmente a la utilización de diferentes cultivares y diferentes explantes para la inducción de callo.

2. AKBAR, M. (2003) Cultivan las puntas delos meristemos de la corona de Annanascomosus en MS con suplemento de NAA y Kn, en concentraciones de 1,5 mg/L y 1,0 mg/L respectivamente, para obtener la formación de callos. A partir de estos callos obtuvieron nuevos brotes, los cuales implantaron en un medio para favorecer la elongación (MS con un 15% de agua de coco). Más tarde en un posterior trasplante de callos, lograron el enraizamiento alseparar individualmente los brotes obtenidos e implantarlos en Ms con 2.0 mg/L IBA. El ochenta por ciento de las plantas sobrevivieron y fueron trasplantadas a campo abierto donde observaron que las plantas regeneradas eran morfológicamente uniformes con las plantas normales.

3. ANJUM et al. (2011) Evaluaron las diferentes concentraciones de las fitohormonas 2,4 –D, IAA, IBA, KN, BAP y lossuplementos como agua de coco, en el medio MS para ver el efecto en los brotes apicales y en la hojas jóvenes en Annonareticulata “anón”, la mejor concentración de auxina fue 2.5 mg/L, mientras que en cytokinina fue de 1.5 mg/L y la de agua de coco al 20% V/V.

4. AVILÉS, FABIOLA et al. (2009) La inducción callogénica en hojasdeJuglans regia L. “Nuez de castilla” en los medios BTM (BroodleafTreesMedia), MS (Murashige y Skoog), DKW (Driver KuniyukiWalnut), WP (WoodyPlant Media) muestra La influencia del medio en las características morfogenéticas del callo resultante.

5. BISWAS et al.(2010). Determinaron la combinación apropiada de las concentraciones citokinina-auxina para establecer un sistema de producción en masa de callos y su habilidad de regeneracion usando diferentes partes...