Coccidioides E Histoplasma

Micosis
Profundas

Histoplasmosis
Coccidioidomicosis
Blastomicosis
Paracoccidioidomicosis

MUESTRA CLÍNICA: exudado bronquial, esputo, LCR Sangre,
Médula ósea, orina

Pruebas inmunológicas

Detección del hongo

HISTOPLASMOSIS
Observación
directa
•a) En fresco
•b) Extendidos

sangre tinción
de wright
•c) Biopsias HE,

Cultivo
•

Aislamiento

•

Purificación

Humorales

•

Identificación

Inmunodifusión

Morfología colonial y
microscópica



Aglutinación



Precipitación



Inmunofluorescecia



ELISA



Fijación de
Complemento

Gomori-Grocott

Fase parasitaria

Estudios
Microbiológicos

Fase vegetativa

Celulares
•

Intradermorre
acción

•

Activación de
linfocitos

Diagnóstico
Esputo Exudado

Tinción de
Wright o
Giemsa

Levaduras intracelulares
Extendido de sangre
tinción dewright

Aspirado
bronquial
Extendido sangre

PELIGRO

SDA y
Micobiotico

28ºC 1-3
semanas

1

2

3
FASE PARASITARIA
Muestras clínicas, 1. Levaduras
extracelulares, tinción de GomoriGrocott, 2. Levaduras
intracelulares, tinción de Wright y
3. Levaduras intra y extracelulares
tinción de HE.

Fase parasitaria de H. capsulatum

Levaduras de H.
capsulatum
Hemocultivo,
crecimiento
levaduriforme enmedio BHI y GS con
cisteina incubado a
37ºC.
Cultivo de levaduras de H.
capsulatum 10 y 100x

MUESTRA CLÍNICA: exudado bronquial, esputo, LCR Sangre,
Médula ósea, orina

Pruebas inmunológicas

Detección del hongo

HISTOPLASMOSIS
Observación
directa
•a) En fresco
•b) Extendidos

sangre tinción
de wright
•c) Biopsias HE,

Cultivo
•

Aislamiento

•

Purificación

Humorales

•

Identificación

Inmunodifusión

Morfología colonial y
microscópica



Aglutinación



Precipitación



Inmunofluorescecia



ELISA



Fijación de
Complemento

Gomori-Grocott

Fase parasitaria

Estudios
Microbiológicos

Fase vegetativa

Celulares
•

Intradermorre
acción

•

Activación de
linfocitos

Fase infectante (micelial) de H. capsulatum

Colonias albinas de crecimiento
lento (45 días), limitado

Cultivo H.capsulatum, fase filamentosa,
múltiples macroconidios digitiformes

Colonias pardas de crecimiento lento (45 días),
limitado

Cultivo de H. capsulatum

H. capsulatum. Micromorfología: macroconidios equinulados, micelio
delgado, hialino, septado, macrosifonado

Micromorfología: micelio
delgado, hialino, septado;
microconidios piriformes
sésiles o con un pequeño
pedúnculo; y macroconidiosdifitiformes.

MUESTRA CLÍNICA: exudado bronquial, esputo, LCR Sangre,
Médula ósea, orina

Pruebas inmunológicas

Detección del hongo

HISTOPLASMOSIS
Observación
directa
•a) En fresco
•b) Extendidos

sangre tinción
de wright
•c) Biopsias HE,

Cultivo
•

Aislamiento

•

Purificación

Humorales

•

Identificación



Inmunodifusión

Morfología colonial y
microscópica



Aglutinación



Precipitación

Inmunofluorescecia



ELISA



Fijación de
Complemento

Gomori-Grocott

Fase parasitaria

Estudios
Microbiológicos

Fase vegetativa

Celulares
•

Intradermorre
acción

•

Activación de
linfocitos

Pruebas serológicas
 Anticuerpos anti-histoplasma se pueden detectar en el

suero del 90% de los pacientes con histoplasmosis

 Los anticuerpos se producen de 2 a 6 semanas después de

laexposición al hongo (esto no se cumple en pacientes
inmunosuprimidos).

 La respuesta serológica correlaciona con la magnitud de la

exposición al hongo y la severidad de la infección.

 75-86% de los pacientes con histoplasmosis moderada son

seropositivos.

 100% de los pacientes con histoplasmosis severa son

seropositivos.

Microinmunodifusi
ón doble
(Ouchterlony)
Generalmente la banda H estápresnte
en la Histoplasmosis
activa. La banda M se presenta
en casos agudos y crónicos o en
individuos que han sido probados
con histoplasmina
Banda H

Banda
M

Doble Inmunodifusión
prueba de Ouchterlony

Humorales detección de anticuerpos

COMPLEMENTO

Sistema indicador

+

+ C´

= LISIS

Globulos rojos + hemolisina + complemento

+

+
Ab-H. capsulatum
suero

C´ = Aglutinación

H. capsulatum...