diagnostico

DIAGNOSTICO DE LABORATORIO

MATERIAL
El material requerido debe ser previamente esterilizado a la flama:
Pinzas de depilar y tijeras finas y fuertes
Hojas de bisturí
Aguja de disección
Cajas de petri, cubreobjetos, y portaobjetos estériles.
Asa micológica y bacteriológica
Matraces Erlenmeyer
Tubos de ensayo
Hisopos estériles
Espátulas, torundas
Cepillos
Jeringas de InsulinaFrascos
Solución salina, alcohol 70°
Medios de cultivo

SELECCIÓN DE MUESTRAS
La muestra debe ser representativa del proceso infeccioso.
Cuando se va a proceder a tomar un espécimen clínico, es importante evitar la contaminación con microorganismos saprofitos del área. Esta flora normal puede interferir con la interpretación del cultivo y enmascarar la presencia del verdadero agente etiológico dela enfermedad.
Seleccione el tipo anatómico correcto donde se obtendrá el espécimen, y utilice la técnica apropiada y los instrumentos o elementos adecuados para su obtención.
En el caso de investigar microorganismos anaeróbicos, la biopsia y el aspirado con aguja, son las muestras de elección.
Nunca refrigere una muestra por anaerobios.
Coleccione un apropiado volumen de muestra.Insuficiente material puede ser causa de resultados falso-negativos.
Identifique cada muestra con el nombre del paciente, número de identificación personal (Número de seguro social o Cédula de identidad personal), procedencia, tipo de muestra, fecha de colección e iniciales del funcionario que tomó la muestra.
El paciente que lleve algún tratamiento deberá suspenderlo durante tres días antes de la toma demuestra.


TIPOS DE MUESTRAS


ABSCESOS, FÍSTULAS y HERIDAS

Limpie la superficie del absceso o herida con solución salina estéril o alcohol etílico al 70%.
Si el absceso es cerrado, preferiblemente aspire con aguja la muestra de la base o de la pared de la lesión. Cultive por anaerobios también.
En caso de absceso abierto, fístula o herida, introduzca un hisopo profundamente dentro dela lesión, sin tocar el área superficial ya que puede introducir en la muestra bacterias que están colonizando la superficie y no están envueltas en el proceso infeccioso.
No cultive lesiones secas, a menos que esté presente el exudado.
De ser necesario, puede refrigerar la muestra hasta por 1 hora antes de enviar al laboratorio. No envíe solo pus, ya que ésta no es representativa de la lesión.La base y bordes activos de la lesión son más apropiados.


HEMOCULTIVOS

Desinfecte el tapón de caucho del frasco de hemocultivos con alcohol etílico al 70%. No utilice solución de yodo para limpiar el caucho.
Asépticamente desinfecte el sitio de la venopunción con alcohol etílico al 70% y luego con una preparación de yodo en círculos concéntricos hacia fuera del sitio elegido. Espere que elyodo seque y realice la punción sin palpar de nuevo.
Coleccione la muestra de sangre a razón de 0.5 – 2 ml para niños y 5-10 ml para adultos en cada frasco. El volumen de sangre a cultivar es el factor más importante en la recuperación del microorganismo.
Cada frasco debe ser servido con una punción diferente en diferentes tiempos, a menos que utilice a la vez frascos para organismos aeróbicosy anaeróbicos. Nunca llenar todos los frascos con sangre provenientes de una sola punción.
No tomar sangre del catéter, a menos que se esté realizando un estudio epidemiológico.




QUEMADURAS

Limpiar y desbridar la superficie de la quemadura antes de proceder a coleccionar la muestra. Una pequeña cantidad de tejido puede ser apropiada para el cultivo. Si hay supuración utilice unCulturette. Solicite cultivo aerobio solamente.

CATETER

Limpie la piel alrededor del catéter con alcohol etílico al 70%.
Asépticamente remueva el catéter y corte 5 cm de la punta distal y colóquela en un tubo o envase estéril sin medio de cultivo. Transporte inmediatamente al laboratorio para prevenir la desecación.

LIQUIDO CEFALORRAQUIDEO

Asépticamente desinfecte con tintura de yodo al...