diagrama de mineralizacion
Páginas: 2 (491 palabras)
Publicado: 22 de mayo de 2015
El material del suelo I se recoge de los bosques de hoja caduca en
el suroeste de Suecia en julio y del suelo II y III en Torup.
Después de la eliminación de la basura, cinco muestras de losprimeros 5 cm del suelo fueron recogidas al azar dentro de un cuadrado de 20 por 20 m.
Las muestras se tamizaron a través de una malla de 4 mm y luego agruparon.
se dejaron secar al aire a temperaturaambiente durante 1 semana.
Un total de 90 lavados con ácido (HCl al 10% durante 1 día) y quemado
(400 8C durante 12 h).
En botellas de 100 ml de suero se agregaron 10 g de suelo secó.
Los suelosfueron humedecidos de nuevo a 60% de la capacidad de retención de agua mediante la adición de agua desionizada con una pipeta automática, y luego suavemente mezclados.
Las botellas se dejaron durante lanoche en un orbital agitadora una temperatura de 150C.
Al día siguiente a las botellas fueron divididas en dos grupos, uno
recibió 1,0 ml de 15NH4Cl (98% 15N ) a concentraciones de 510, 86, y 17mM
NaNO3 a concentraciones de 110, 170, y 60 mm para suelo I, II, y III, respectivamente, y el otro 1,0 ml de Na15NO3(99% 15N) NH4Cl en
las mismas concentraciones que antes.
Los dos grupos eranpor lotanto, expuesta al mismo tratamiento, pero etiquetados en NH4 o en NO32 .
Se dividen en tres subgrupos de 15 botellas cada una, que recibieron las etiquetas inmediatamente o después incubacióndurante 3 o 6 días a 150C en el agitador orbital.
Dando como resultado el enriquecimiento de 15N varió entre 6 y 25% para NH4
y entre 3 y 16% para NO32.
Las botellas se muestrearon destructivamente, enréplicas de cinco, 1 y 2 días después de la adición de la etiqueta.
Esto hizo posible estimar las tasas de transformación de N en diferentes fases siguientes del crecimientomicrobiano inducido.
El suelo se utilizó para las mediciones de la ATP, digestión Kjeldahl, yextracción de NH4
y NO32.
La respiración microbiana fue medida 1 o 2 días después de la adición de la...
El material del suelo I se recoge de los bosques de hoja caduca en
el suroeste de Suecia en julio y del suelo II y III en Torup.
Después de la eliminación de la basura, cinco muestras de losprimeros 5 cm del suelo fueron recogidas al azar dentro de un cuadrado de 20 por 20 m.
Las muestras se tamizaron a través de una malla de 4 mm y luego agruparon.
se dejaron secar al aire a temperaturaambiente durante 1 semana.
Un total de 90 lavados con ácido (HCl al 10% durante 1 día) y quemado
(400 8C durante 12 h).
En botellas de 100 ml de suero se agregaron 10 g de suelo secó.
Los suelosfueron humedecidos de nuevo a 60% de la capacidad de retención de agua mediante la adición de agua desionizada con una pipeta automática, y luego suavemente mezclados.
Las botellas se dejaron durante lanoche en un orbital agitadora una temperatura de 150C.
Al día siguiente a las botellas fueron divididas en dos grupos, uno
recibió 1,0 ml de 15NH4Cl (98% 15N ) a concentraciones de 510, 86, y 17mM
NaNO3 a concentraciones de 110, 170, y 60 mm para suelo I, II, y III, respectivamente, y el otro 1,0 ml de Na15NO3(99% 15N) NH4Cl en
las mismas concentraciones que antes.
Los dos grupos eranpor lotanto, expuesta al mismo tratamiento, pero etiquetados en NH4 o en NO32 .
Se dividen en tres subgrupos de 15 botellas cada una, que recibieron las etiquetas inmediatamente o después incubacióndurante 3 o 6 días a 150C en el agitador orbital.
Dando como resultado el enriquecimiento de 15N varió entre 6 y 25% para NH4
y entre 3 y 16% para NO32.
Las botellas se muestrearon destructivamente, enréplicas de cinco, 1 y 2 días después de la adición de la etiqueta.
Esto hizo posible estimar las tasas de transformación de N en diferentes fases siguientes del crecimientomicrobiano inducido.
El suelo se utilizó para las mediciones de la ATP, digestión Kjeldahl, yextracción de NH4
y NO32.
La respiración microbiana fue medida 1 o 2 días después de la adición de la...
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