enfermera

BIOTECNOLOGÍA
CURSO 2014-15

FISIOLOGÍA VEGETAL

PRÁCTICAS

Profesoras:
Dra. Inmaculada Recasens
Dra. Yolanda Soria
Con la colaboración de:
Sandra Cervelló (Auxiliar de Laboratorio)
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INDICE DE PRÁCTICAS DE FISIOLOGIA VEGETAL
página
1. Observación y descripción histológica de tejidos y órganos vegetales ……………………..5
2.- Determinación del potencial hídrico de un tejido dereserva, mediante el método
gravimétrico. Desarrollada en 1 día………………………………….…........................................6
3.-Cultivos hidropónicos: estudio de carencias minerales. Desarrollada en varios días……..…9
4.- Determinación del potencial hídrico de hojas mediante la cámara de presión. Desarrollada
en 1 día…………………………………………………………………………………………….12
5.- Bioensayo de giberelinas en endospermo decebada. Desarrollada en 3 días………………14
6.- Bioensayo de inducción de epinastia en hojas, mediante etileno. Desarrollada en varios
días. …………………………………………………………………………………………….....17
7.- Efecto del estrés salino en la germinación y desarrollo de plántulas. Desarrollada a lo largo
de varios días……………………………………………………………………………………...18
8.- Extracción y caracterización de pigmentos no fotosintéticos.Desarrollada en 1
día………………………………………………………………………………………………....19

Material vegetal:
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.

Preparaciones histológicas de diferentes tejidos y órganos vegetales
Patatas y zanahorias
Semillas de judía y maiz
Semillas de cebada
Plantas de tomatera, manzanas maduras
Hojas de diferentes árboles
Semillas de rábano, acelga y tomate
Col lombarda y remolacha

2ORGANIGRAMA DE PRÁCTICAS
1er DÍA: Martes
Práctica 1.- Observación y descripción histológica de tejidos y órganos
vegetales (1/1).Esta práctica se realizará en el laboratorio de Botánica, planta 1, del
edificio 2
Las siguientes prácticas, se realizarán en el laboratorio de Hortofructicultura y en el
laboratorio de Fisiología vegetal, en la planta 2, del edificio 2.
2º DÍA: Miércoles.
Práctica 2.-Determinación del potencial hídrico de un tejido de reserva,
mediante el método gravimétrico. (1/1)
Se inicia la práctica colocando las muestras preparadas de los tejidos de reserva en
soluciones de sacarosa con diferentes potenciales hídricos; se dejarán 2h en estas
soluciones. Después de las 2h se tomarán los datos finales para calcular el potencial
hídrico.
Práctica 5.- Bioensayo degiberelinas en endospermo de cebada. (1/3) Hay que
preparar las semillas para realizar la práctica al día siguiente: escarificación de las
semillas en una solución acuosa de H2SO4 (50%) durante 3 horas y dejarlas en
imbibición durante 24h, en frío.
Práctica 3.- Cultivos hidropónicos: estudio de carencias minerales (1/3). Se
prepararan las soluciones nutritivas y se colocaran las plántulas en lacámara de
cultivo
3er DÍA: Jueves
Práctica 5.- Bioensayo de giberelinas en endospermo de cebada. (2/3)
Se realiza la práctica en condiciones estériles en las campanas de flujo laminar, por
turnos. Se dejarán las mitades de las semillas en incubación durante 4 días
Práctica 6.- Bioensayo de inducción de epinastia y abscisión en plantas de
tomatera mediante etileno emitido por una fruta madura.(1/2)
Se encierran las plantas de tomatera en una bolsa con una manzana madura que
emite etileno; se observará su comportamiento en los días sucesivos.
Práctica 7.- Efecto del estrés salino en la germinación de semillas. (1/3)
Se prepararán soluciones salinas en las que se pondrán a germinar semillas de
diferentes especies. Los resultados se observarán en días posteriores.
4º DÍA: ViernesPractica 8.- Extracción de pigmentos no fotosintéticos, influencia del pH en
el color de antocianinas y betacianinas. (1/1)
Practica 4.- Determinación del potencial hídrico de hojas mediante la cámara
de presión (1/1).
5º DÍA: Lunes
Práctica 3.- Cultivos hidropónicos: estudio de carencias minerales.
Se trasladaran las plantas desde la cámara de cultivo al laboratorio, donde se
renovará la...