Espermatobioscopia

MUESTRA: Se recolecta la muestra después de un período de abstinencia sexual de 3 días, preferentemente por masturbación.
REACTIVOS, MATERIAL Y EQUIPO:
-Recipiente parala recolección de la muestra
-Probeta graduada de 10 ml
-Pipetas de transferencia
-Papel para determinación de pH
-Dilutor
-Cámara de Neubauer
-Portaobjetos ycubreobjetos
-Colorantes para tinción
-Microscopio
4. Descripción de la Actividad:
VOLUMEN: Utilice una probeta graduada
VISCOSIDAD Y TIEMPO DE LICUEFACCION: La licuefaccióndebe ser total antes de 30 minutos. Para valorar la viscosidad, sumergir una varilla de vidrio en la muestra y medir la longitud del filamento (normal: 5-10 mm); Otro criterioes que debe gotear libremente.
pH: Utilice un papel indicador de pH
RECUENTO: Diluya la muestra 1:20 con solución de Macomber y Saunders (formol, bicarbonato de sodio yagua destilada) . Se puede utilizar satisfactoriamente agua del grifo. Llene la cámara de Neubauer y cuente los espermatozoides que observe en cinco de los cuadros pequeñosdel cuadrado central. Efectúe sus cálculos y reporte espermatozoides/ml
MOTILIDAD: Valorarla entre los 30 y 60 minutos del eyaculado. Colocar una gota entre porta- ycubreobjetos y observar con elobjetivo 40X del microscopio. El porcentaje de espermatozoos con movimiento progresivo haciaadelante puede estimarse después de observaraproximadamente 20 campos. La motilidad se puede clasificar en la escala del 0 al 4, indicando 4 movimiento rápido y progresivo hacia delante y 0 indicando ausencia de movimiento.MORFOLOGIA: Teñir un frotis delgado utilizando el método de Giemsa, Wrighto Papanicolaou. Observar bajo aceite de inmersión al menos 200 espermatozoos y reportar como porcentaje.