HIDROLISIS ENZIMATICA DEL ALMIDON





UNIVERSIDAD NACIONAL MAYOR DE SAN MARCOS
FACULTAD DE MEDICINA
ESCUELA ACADEMICO PROFESIONAL DE ENFERMERIA













PRACTICA 4. hidrolis enzimatica del almidon





ASIGNATURA: BIOQUIMICA
DOCENTE DE PRACTICA: OSCAR ACOSTA C.
INTEGRANTES:







2012 – II






INTRODUCCION


La hidrólisis implica la rupturade un enlace mediante la adición en medio del mismo de los elementos del agua. Los polisacáridos de la dieta se metabolizan mediante hidrólisis a monosacáridos.

La mayoría de los pasos de la degradación de almidón a glucosa pueden ser catalizados por tres enzimas distintas, si bien hay otras más que se necesitan para completar el proceso. Las tres primeras enzimas son una ð-amilasa, ð-amilasa yalmidón fosforilasa.
La ð-amilasa ataca de manera aleatoria enlaces 1,4 en las moléculas de amilosa y amilopectina, al principio creando huecos al azar en los granos de almidón y liberando productos que aun son grandes.
En cadenas de amilosa no ramificadas, el ataque repetido por la ð-amilasa produce maltosa, un disacárido que contiene dos unidades de glucosa. Sin embargo, la ð-amilasa nopuede atacar los enlaces 1,6 localizados en los puntos de ramificación de la amilopectina, por lo que la digestión de amilopectina cesa cuando aun quedan dextrinas ramificadas con cadenas de longitud corta. Muchas ð-amilasas son activadas por Ca+, lo cual es una de las razones por las que el calcio es un elemento esencial.

En esta practica se observara la acción de la amilasa salival en ladigestión del almidón, dicho proceso se verá en los resultados, la discusión y las conclusiones que se presentara a continuación.





OBJETIVOS
Demostrar experimentalmente la digestión del almidón por la enzima amilasa salival.
Identificar que factores alteran la actividad de la amilasa salival.

MATERIALES
Solucion de HCl 0.5 N, sol. NaCl 0.9 g%, buffer fosfato 0.1M pH 6.8, almidon 1%,reactivo de Benedict, lugol.
Tubos de ensayo, gradilla, pipeta.
Plumón rotulador.







RESULTADOS
Primero, antes de obtener los resultados, se hizo una recolección de saliva en un beaker.

Luego se midió 1ml de saliva y se echó en un tubo de ensayo, se añadió 4ml de agua destilada y se homogenizó.

Posteriormente pasamos a preparar los digeridos, con las siguientes mediciones.TUBOS Nª
D1
D2
D3
ml almidón 1%
2.0
2.0
2.0
Ml Buffer pH 6.8
1.0
1.0
-
ml NaCl 0.9 g%
1.0
-
-
ml HCl 0.5N
-
-
1.0
ml Agua destilada
-
1.0
1.0
ml saliva diluida
1.0
1.0
1.0




Estos tubos se llevaron a baño maría de 37º por 10 minutos.

Luego procedimos a preparar las siguientes determinaciones:

1. Determinación de azucares reductores



Tubos Nº
B1
B2B3
ml tubo D1
1.0
-
-
ml tubo D2
-
1.0
-
ml tubo D3
-
-
1.0
ml reactivo de Benedict
0.5
0.5
0.5












2. Determinación de polisacáridos.










Tubos Nº
L1
L2
L3
Ml tubo D1
1.0
-
-
Ml tubo D2
-
1.0
-
Ml tubo D3
-
-
1.0
Ml HCl 0.5 N
0.5
0.5
0.5
Ml lugol
0.5
0.5
0.5
















DISCUSION DE RESULTADOSDeterminación de azucares reductores:
En los tubos B1 y B2, si hubo presencia de azucares reductores, y el color rojo ladrillo. No se presento el sustrato (almidón). El tubo B3 a diferencia de los demás tubos, no se presento azucares reductores. En este tubo no se presento el color rojo ladrillo y si se presento el sustrato (almidón).

Determinación de polisacáridos:
En los tubos L1 y L2 no sepresento el sustrato, si hubo actividad enzimática y azucares reductores. En cambio en el L3 si se presento el sustrato y no tubo actividad enzimática ni azucares reductores.

.
















CONCLUSIONES


Concluimos que el reactivo de Benedict nos ayuda a identificar los azucares reductores, esto se pudo observar mediante el cambio de color (rojo ladrillo). Por otro...