Lo k mas odio de mi

Revista de Biología Marina y Oceanografía 42(2): 201 – 204, agosto de 2007

Substituciones en la unidad D-Galactosa de polímeros del agar: Implicaciones metabólicas
Substitutions on the D-Galactose unit of agar polymers: Metabolic implications Mauricio A. Ondarza1
1

Departamento de Ingeniería Ambiental. Unidad Académica Multidisciplinaria Reynosa Rodhe. Reynosa, Tam, Universidad Autónomade Tamaulipas, Carretera a San Fernando cruce con canal Rodhe s/n. México mondarza@uat.edu.mx methylation. Based on the 6-O-Me-Gal/ 4-O-Me-Gal ratio and the degree of substitution of D-Gal unit, a new approach for monitoring the characteristic events of agar metabolism was defined. Key words: Agar, Gracilaria verrucosa, biosynthesis, Omethylation

Abstract.- Regarding macroalgae´s physiology, itis considered that substitutions on the L-Gal unit of agar polymers are representative of their biosynthesis. Studies performed within the Plant Cell Wall Polysaccharides Laboratory team have demonstrated the presence of 4-Omethyl-L-galactose in agar polymers from the rhodophycean thallophyte Gracilaria verrucosa and its linkage on the C-6 position of the D-Gal unit, which is also the site of O-Introducción
El agar ha sido definido como una secuencia regular alternante entre unidades: 3-O-β-D-galactopiranosa y 4-O-3,6-anhidro-α-L-galactopiranosa (Araki C 1967) y es igualmente considerado como una familia de galactanos que difieren en su variedad, extensión y en las proporciones relativas de las substituciones en la unidades galactosa (Duckworth & Yaphe 1971). Es así como ambasunidades D y L pueden ser substituidas con metil-éteres (C-6 en la unidad D, C-2 de la unidad L) y con esteres de sulfato (C-2, C-4 y C-6 de la unidad L). El mayor tipo de sulfatación ocurre como α-Lgalactosa-6-sulfato (L-Gal-6-sulfato) que puede ser convertido a 3,6-anhidro-α-L-galactopiranosa (3,6-AG), por vía enzimática, química o por tratamiento con álcalis. Se considera a este polímero sulfatadocomo el precursor biológico de la agarosa, representando la única etapa hasta ahora reportada en la biosíntesis de polímeros del tipo agar. La aplicación de condiciones de cultivo controlado, junto con la disponibilidad de especies bien definidas taxonómicamente, han conducido a resultados que establecen la influencia de parámetros como: la intensidad luminosa, la temperatura y el aporte denutrientes, en la calidad del agar. Se ha sugerido que la heterogeneidad y complejidad del agar pudiera reflejar

actividades metabólicas (Asare 1980, Bird et al. 1981). Considerando la presencia novedosa de cadenas laterales simples de 4-O-metil galactosa (4-O-Me-Gal) que modifica la definición del agar como cadena lineal polimérica, se decidió seguir la evolución de polímeros del agar y su metabolismo,a través de cultivos controlados, y la comparación de su composición química con la de plantas nativas en su estado natural.

Material y métodos
Condiciones de cultivo controlado Gracilaria verrucosa (Hudson) Papenfuss fue recolectada en el cabo Nariz Gris (noreste de Francia). El material vegetal se dividió en tres partes: a) material nativo en su estado inicial, b) muestra II y c) muestraIII, las cuales fueron sometidas a dos condiciones de cultivo: promotoras de crecimiento (CPC) y no promotoras de crecimiento (CNPC). Condiciones promotoras de crecimiento (CPC) Segmentos de ejes primarios centrales (EC) y de ramificaciones laterales (RL) de 5 cm de longitud, obtenidas a partir de la muestra II, fueron aclimatados a intensidades luminosas semejantes a las imperantes en el verano. Lairradiación se fijó en 62 mE m-2 s-1 (lámparas incandescentes Gros-lux y fluorescentes

202

Revista de Biología Marina y Oceanografía

Vol. 42, Nº2, 2007

Cool-white). El fotoperíodo fue programado en un ciclo 16:8 h (luz: oscuridad). La temperatura se mantuvo en 24 ± 2°C. El aire fue suministrado al acuario. El medio consistió en agua de mar natural (3 L), enriquecida con medio...