metodos de laboratorio

Tinción al Ziehl Neelsen
1) Hacer el frotis del producto a investigar: esputo, sedimento urinario, etc.
2) Dejar secar a temperatura ambiente añadir alcohol metílico, retirar el alcohol, dejarsecar.
3) Teñir al Ziehl Neelsen:
a) Colocar el colorante de fucsina fenicada hasta cubrir todo el porta objeto.
b) Calentar 5 minutos con lámpara de alcohol, sin dejar que se seque añadiendocolorante
c) Decolorar con alcohol acido
d) Añadir azul de metileno durante 1 minuto
e) Lavar con agua corriente ( al chorro leve de la llave o el grifo)
f) Dejar secar y observar a inmersión.
Liquidode diálisis
1) Tomar en tubo de ensayo aprox. 5.0 ml
2) Anotar características físicas:
a) Color (Lig. Xantocromico o incoloro)
b) Aspecto (transparente, lig. Turbio, turbio)
c) Coagulo(positivo o negativo)
3) Tomar 1 gota y llevar a la cámara cuenta glóbulos (Neubauer)

1 Bcos 2 Bcos
Rojos y Plaquetas
3Bcos 4 Bcos
Para el recuento de células, contar los 4 cuadriculas (1, 2, 3,4); multiplicar N° de leucocitos, dividir entre 4 y multiplicar x 10 = N° de leucocitos.
4) Diferenciar: centrifugar eltubo, desechar el sobrenadante, colocar 1 gota de colorante Burgueño, mezclar y reposar 5 minutos.
Observar Monónucleados y Polínucleados:
Para reportar: contar 10 células, las cuales se diferencianentre poli o monos.
Ejemplo: si contamos 7 Polínucleados equivale al 70% y el resto 30% de Monónucleados, si se observan 10 poli o 10 monos se consideran 100%.



Espermatobioscopia directa:1) Medir volumen, reportar en ml.
2) Viscosidad (si hay filamento normal y si no lo hay anormal)
3) Licuefacción: en una hora debe estar líquido, viscoso=normal.
4) Medir Ph con tira reactiva.
5)Movilidad: en un porta objeto colocar 1 gota de líquido y cubrir, observar al microscopio (si hay movimiento en todos 100%)
6) Motilidad: llevar un sentido hacia un fin
7) N° de espermas
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