Poe materia organica

UNIVERSIDAD NACIONAL DE COLOMBIA  FACULTAD DE CIENCIAS, DEPARTAMENTO DE QUÍMICA DETERMINACIÓN DE CARBONO ORGÁNICO MÉTODO  WALKLEY –BLACK POR TITULACIÓN. (QA‐M0015)  Página 1 de 5 
 

   

 

DETERMINACIÓN DE LA CAPACIDAD DE INTERCAMBIO CATIÓNICO POR EL MÉTODO DEL ACETATO DE AMONIO 1M A pH 7.0.
Tipo No Revisión No Fecha No     1. OBJETIVO PROCEDIMIENTOS QA-M015 01/10/2008 Realizado por:Firma Aprobado por: Firma Ítem

Julio César España Amórtegui

Lab Química Agrícola

Este documento describe el procedimiento para la determinación de carbono orgánico método Walkley –Black por titulación. 2. ALCANCE Se aplica para la determinación de la capacidad de carbono orgánico método Walkley – Black por titulación basados en la reducción del anión dicromato en medio acuoso sobre muestrasde suelos previamente secados al aire y tamizados hasta 2mm. Las mediciones son aplicables a la mayoría de los suelos con fines agrícolas. 3. DEFINICIONES Entre los elementos principales que constituyen la materia orgánica del suelo, el carbono es el que mejor se puede cuantificar en forma rápida. Por tanto, la estimación de la materia orgánica se ha basado en la determinación del carbonoorgánico. En general la determinación de este elemento se fundamenta en procedimientos ue implican la conversión de la forma orgánica a la inorgánica como CO . Esta transformación se puede inducir por procedimientos de combustión o por métodos de oxido- reducción que involucran el tratamiento de la muestra con un agente oxidante fuerte. Un oxidante comúnmente utilizado es el anión dicromato, cuyo exceso(no reducido) es cuantificado por titulación o por colorimetría. El contenido de carbono orgánico en el suelo puede expresarse directamente en valor porcentual o ser estimado en forma de materia orgánica. En este caso el contenido de carbono se multiplica por 1,714 (factor de van Bemmelen) y se basa en la hipótesis de que la materia orgánica del suelo tiene un 58% de carbono. 4. MATERIALESNECESARIOS • • • • • • • Erlenmeyers de 125 mL y de 250mL. Bureta de 25 mL. Agitador magnético. Plancha de agitación. Vaso de precipitados de 100mL. Pipetas aforadas de 5,10 y 20mL. Balones aforados de 1L y 100mL.
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Balanza con 0,1g de precisión.

5. TRATAMIENTO DE LA MUESTRA La muestra debe estar seca al aire o a temperatura no mayor de 35°C, molida y tamizada con una malla de 2 mm. 6. PREPARACIÓN DE REACTIVOS 6.1. Agua destilada: Conductividad no mayor a 0,2μS/cm a 25°C 6.2. Ácido sulfúrico concentrado: Ácido sulfurico, H SO grado técnico.
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6.3. Dicromato de potasio 1N: Disolver enagua destilada ligeramente caliente 49,0314g de K Cr O (estándar primario) pulverizado y seco a 105°C. Cuando la solución se encuentre a temperatura ambiente, llevar a volumen de 1L en un balón aforado. 6.4. Ácido fosfórico concentrado: Ácido fosfórico concentrado H PO R.A.
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6.5. Ácido clorhídrico diluído: Tomar 10mL de HCl R.A.(37%, d: 1,185g/mL) y ponerlo en un matraz de 50mL con unmínimo de 20mL de agua y llevar a volumen para obtener una solución de HCl al 8,8%. 6.6 Indicador complejo hierro (II)- ortofenantrolina 0,025M: Pesar 1,48g de ortofenantrolina base en un vaso de precipitados de 100mL disolver en 20mL de agua destilada agitando y adicionando gotas de HCl diluído. Por separado pesar 0,70g de sulfato ferroso (FeSO *7H O) en un vaso de precipitados de 100mL y disolveren 20mL de agua. Mezclar las dos soluciones y llevar a un volumen final de 100mL con agua destilada en un balón aforado. 6.6. Sulfato ferroso amónico 0,5N: Disolver 196,07g de Fe(NH ) (SO ) *6H O en 800mL de agua destilada y 20mL de H2SO4 concentrado y llevar a un volumen de 1L con agua destilada en un balón aforado. 7. PROCEDIMIENTOS EXPERIMENTALES: 7.1 Etapa de extracción 1. Pesar en un...