practicas microbiologia

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PRÁCTICAS DE MICROBIOLOGÍA



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01/01/2013





 
PRÁCTICA 1 : INVESTIGACIÓN DE SALMONELLA EN SARDINAPre-enriquecimiento de sardina
24 horas enriquecimiento: RV, SC
Aislamiento Mc Conkey, SS, Hektoen
Pruebas de comprobación de salmonella (Gram, Kliger, SIM, movilidad)

Sembramos salmonella en 3 mediosselectivos (225 ml H2O peptona tamponada, 25 g alimento)
S-S
Hektoen
MC Conkey
Lo dejamos 24 horas a 37ºC y observamos lo siguiente:
S-S: colonias incoloras más precipitado negro.
Hektoen:colonias verdosas.
Mc Conkey: colonias incoloras.
Lo dejamos de nuevo 24 horas más a 37ºC y observamos que han aumentado el número de colonias en los tres medios.

PRACTICA 2: IDENTIFICACION YCARACTERIZACION DE STREPTOCOCCUS FAECALIS EN CARNE PICADA
Prueba presuntiva (carne picada)
Caldo KAA  KAA+SLANETZ (Gram, BHI + 6,5 % NaCl)
Hacemos una siembra por agotamiento o por estrías en dos medios:KAA
SLANETZ
Lo dejamos 24 horas a 37ºC y observamos:
KAA: Las colonias son aisladas y blanquecinas, es oscuro por la hidrolisis de la aesculina. Aparecen colonias circulares que no son negrossino transparentes con un halo negro y se encuentran en las líneas de las estrías.
SLANETZ: las ufc son entre rosa y granates se encuentran repartidas a lo largo de la línea de estría. El color sedebe al TTC.
La observación a las 48 y 72 horas es igual, solo que el número de colonias va aumentando.
*KAA  BHI +6.5% NaCl; no se pone turbio, no hay crecimiento.

PRÁCTICA 3: R-A DESTAPHYLOCOCCUS AUREUS EN PASTEL
Enriquecimiento (pastel) GC GC+BP
Reducción del terulito potásico.
Sembramos en Baird-Parker (BP)
Lo dejamos 24 horas a 37ºC y observamos que no hay crecimiento, por lotanto hay ausencia de S. Aureus.
Volvemos a sembrar con el tubo más oscuro y concentrado y lo dejamos 24 horas a 37ºC y tampoco se observa crecimiento de colonias.
A las 48 horas a 37ºC tampoco hay...