Protocolo De Tincion De Células Con Ioduro De Propidio
Materiales e insumos:
* Eppendorf de 1,5ml.* Placa con células sensibles.
* Concentrado de Toxina killer.
* Buffer PBS:
* 2g/l KH2PO4
* 6,1g/l Na2HPO4
* 80g/l NaCl
* Ajustado a pH 7,6
* Ioduro depropidio (50ug/ml) preparado en buffer PBS.
* Portaobjetos y cubreobjetos.
* Guantes de látex.
Equipos:
* Micropipetas automáticas
* Microcentrífuga
* Flujo laminar
* Microscopiode fluorescencia.
Procedimiento:
A) Preparación de suspensión de células:
* Repicar en placa de medio GPY la cepa sensible con 24hs. de antelación.
* Realizar una suspensión deaproximadamente 1.107 cél/ml de la cepa sensible.
B) Incubación con la toxina killer:
* Incubar con la toxina el tiempo necesario y en la proporción necesaria.
* Los controles negativos serealizan con las células incubadas con agua, buffer o también con la toxina hervida durante 10min.
* Se puede utilizar como control positivo las células incubadas con alcohol 70% durante 2h.
*Tomar 200ul de la mezcla.
* Es conveniente tomar una muestra a t=0
* Centrifugar 2 min a 5000rpm y verificar la aparición de un pellet de células.
* Retirar el sobrenadante con cuidado.C) Lavados:
* Resuspender las células en 1ml. de buffer PBS.
* Centrifugar durante 2 min. a 5000 rpm.
* Descartar el sobrenadante.
* Resuspender las células en 1ml. de buffer PBS.* Centrifugar durante 2 min. a 5000 rpm.
* Retirar el sobrenadante.
D) Tinción con ioduro de Propidio.
* Agregar 25ul de buffer PBS + Ioduro de Propidio (50ug/ml).
* Incubar30min. En oscuridad.
E) Observación en el microscopio.
* Tomar 5ul y leer en el microscopio de fluorescencia utilizando guantes.
* Es conveniente realizar una observación en modo campo...
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