rabia

TECNICAS ACTUALES DE DETECCION DE LA RABIA •

J. LÓPEZ ROS

(del Departamento Antirrábico del Laboratorio Municipal de Barcelona)

Inmunoprecipitación.
rabia continúa siendo una de
Fijación de complemento.
las enfermedades que mayores
Los
segundos, llamados de diagproblemas plantea en cuanto a su
diagnóstico, y este diagnóstico es nóstico lento y de confirmación,
de interés no sólo para lasperso- son:
Inoculación a animales y deternas mordidas, sino también para
minación
vírica.
la Sanidad Nacional. Se fundamenta el diagnóstico de la enfermedad
Inoculación a cultivos celulares.
en dos procedimientos. la observación y determinación de lesiones
Impresión y coloración SeIlers
histopa tológicas y las modificaciones séricas debidas al contacto con
Es un método simple y muy ráel virus rábico yla identificación pido aconsejable en aquellos paídel virus por aislamiento del mis- ses endémicos de la enfermedad.
mo.
Con este método un técnico entreLos primeros métodos, también nado pone en evidencia los corllamados de diagnóstico rápido, púsculos de Negri en un 85 % de
son:
los casos.
Impresión y tinción.
Histopatológicos.
M aterrial y métodO'
Prueba de los anticuerpos fluoSe preparan lassoluciones:
rescentes.

L

A

A)
B)

So"lución de azul de metileno pUflSlmo .
Alcohol metílico absoluto libre de acetona
Solución de fucsina básica purísima
Alcohol metílico absoluto y puro

10 grs.

1.000 cc.
5 grs.
500 cc.

(*) Comunicación explanada en la Sesión del día 30-IV-68. Presentación de los Académicos Corresponsales Nacionales doctores A. Valls Conforto y 1. Vives Sabater.

214ANALES DE MEDICINA Y CIRUGIA

Estas soluciones se conservan en
refrigerador a .+42 C.
En el momento de su empleo se
mezclan dos partes de la solución
A y una parte de la solución B.
Estas proporciones, sin embargo,
se ajustarán según el aspecto del
frotis. El aspecto ideal es el color
violáceo, aunque en los acúmulos
tisulares se observe una cierta tendencia al color rojizo.
La mezcla de Sellers puedeconservarse bien en el refrigerador una
vez ajustada la proporción ideal.
Realizada la impresión del asta
de Ammon sobre portaobjetos, y
aún fresca, se introduce en la mezcla colorante durante dos, tres segundos y a continuación se aclara con agua.
Las preparaciones ya secas o fijadas, no son aconsejables, aunque en estos casos el contacto con
el colorante debe ser de unos cinco minutos.
Se secala preparación y se observa. Los acúmulos celulares de neuronas muestran un citoplasma de
un color azul pálido, los núcleos
son rojos. Los corpúsculos de Negri toman una forma esferoidal,
granulosa y color violáceo próximo
al rojo. Son únicos o múltiples y
situados en el citoplasma .celular,
generalmente en las proximidades
.
del axon.
Pueden ocasionar dudas los eritrocitos superpuestos, loscuerpos
de inclusión de la enfermedad de
Carré (aunque más pequeños y sin
granulación), los cuerpos de inclu-

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sión de los virus neumo-neurótropos del gato, las células plasmáticas de la panleucopenia felina, etc.
Sin embargo, es de recordar que
estas posibles causas de error no
son muy frecuentes en el asta de
Ammon, y lo son en las neuronas
de la corteza cerebral y en lascélulas de Purkinje del cerebelo.
Métodos histopatológicos
Los métodos histopatológicos,
tan profusamente utilizados en el
diagnóstico de la rabia ,tienen una
utilidad indiscutible, pero teniendo
en cuenta varios puntos de suma
importancia. La lesión tisular producida por el virus rábico en el
cerebro y cerebelo consiste en una
poliencefalitis plurifocal pero con
zonas de preferencia; por lo tanto,distinta de la encefalitis por arbovirus que verdaderamente· produce
panencefalitis.
En la rabia típica existen: a)
Lesiones en la sustancia gris de
la medula (cuernos ánteroposteriores). b) Lesiones en la parte rostral de bulbo y puente de Varolio,
yo) Lesiones en el asta de Ammon,
hipocampo, células de Purkinje y
ganglios espinales y básicos (Gasser y plexiformes).
N o son frecuentes las lesiones...