Resistencia antimicrobiana

VIGILANCIA DE LOS MECANISMOS DE RESISTENCIA A LOS ANTIMICROBIANOS. (PRUEBAS DE TAMIZAJE).

1. Detección de Beta- lactamasa de espectro ampliado.(BLEA)
Detección de Beta- lactamasa de espectro expandido.(BLEE)
Las BLEA solo se determinan en E. coli, P. mirabilis, Shigella spp, Salmonella spp Klebsiella spp.
Las BLEE se determinan en todas las enterobacterias.
Ambas se investigancolocando en la misma placa de Agar Mueller Hinton los siguientes discos: Amoxacilina/Ac. Clavulánico a una distancia aproximada de 25mm se colocan los discos de Cefotaxime, Ceftazidime, y adicionalmente se ensayan los discos de Cefepime y Ampicilina. La interpretación se realiza de la siguiente manera: Si solo se obtiene resistencia a Ampicilina, se considera BLEA, aún cuando presente halo de inhibiciónmás grande en Amoxacilina/Ac. Clavulanico y sensibilidad a Cefalosporinas de segunda y tercera generación.
Si se observa deformación del halo (efecto huevo) entre Amoxacilina/Ac. Clavulanico y Cefotaxime y/o Ceftazidime, se considera BLEE. Puede ocurrir que solo aparezca la deformación del halo con el disco de Ceftazidime, esto se debe a que la mayoría de las BLEE tienen mayor afinidad por laCeftazidime que por la Cefotaxime, en este caso hay que reportar resistencia a todas las Cefalosporinas de tercera generación.
Interpretación: Las BLEA se reportan como posible BLEA y dependiendo del cuadro clínico:
a) En infección urinaria baja no complicada, los antibióticos beta-lactamicos se informan según la interpretación de sus halos de inhibición, teniendo en cuenta que lasinterpretaciones intermedias deberían informarse como sensibles por la concentración de estas drogas en orina.
b) En infección severa, se informa cada antibiótico según la interpretación de su halo de inhibición.
Las BLEE se reportan como cepa productora de BLEE y resistente a todas las penicilinas, Monobactam y Cefalosporinas(incluso las de cuarta generación) independientemente de su eventual sensibilidad inVitro.
2. Vigilancia del nivel de resistencia a las quinolonas en enterobacterias.
Se realiza utilizando discos de Ac. Nalidixico y Ciprofloxacina, colocados a una distancia aproximada de 25 mm, se observan los siguientes fenotipos:
a) Sensibilidad a Ac. Nalidixico y Ciprofloxacina. Se reporta sensible a Ciprofloxacina.
b) Sensibilidad reducida a Ciprofloxacina y resistencia Ac. Nalidixico.Está descrito falla de tratamiento con Ciprofloxacina en pacientes con Salmonelosis extraintestinal.
c) Resistencia a Ac. Nalidixico y Ciprofloxacina. Se reporta resistente a Ciprofloxacina.
Nota: En pacientes con infección urinaria baja no complicada con aislamientos de sensibilidad intermedia a Ciprofloxacina pueden tener respuesta favorable al tratamiento con fluoroquinolonas debido a laconcentración del antibiótico en orina.



3. Detección de resistencia a Oxacilina en Staphylococcus spp.
Se interpreta según la normativa NCCLS, teniendo en cuenta los diferentes puntos de corte para Oxacilina frente a S. aureus y estafilococo coagulasa negativo. La detección de resistencia a Oxacilina implica informar al clínico resistencia a todos los beta-lactámicos aunque haya presentadohalos de sensibilidad en el antibiógrama.
A. Staphylococcus aureus:
En Staphylococcus aureus, si el halo de Cefoxitin es ≤ 19 mm, reportar Resistente a Oxacilina y para halos ≥ 20 mm reportar sensible.
Halo de Oxacilina ≤ a 10 mm: RESISTENTE.
Observar la presencia de resistencia acompañante.
Con resistencia acompañante: informar resistente a oxacilina.
Sin resistencia acompañante: confirmar elresultado, controlar los discos de oxacilina y realizar la placa de agar screening. Si:
“screening” +: informar resistente a oxacilina.
“screening” – y disco confirmado: Detección del gen mec A o su producto PBP2a. Este es un fenotipo infrecuente.

Halo entre 11 y 12 mm:
Independientemente de la resistencia acompañante realizar la placa de agar “screening”.
Si: “screening” +: informar...