trabajos universitarios

Sangre y Plasma Mediciones
A los 42 días de edad, se seleccionaron dos aves por corral (10 aves por tratamiento) para la recogida de sangre. Las muestras de sangre (3 ml) se recogieron por jeringas heparinizadas de la vena braquial y se centrifugaron a 2500 × g durante 10 minutos para obtener plasma. Las muestras de plasma se utilizaron para la determinación del óxido nítrico (NO) ymalonedialdehyde (MDA). Plasma NO (nitrato + nitrito) se midió de acuerdo con Behrooj et al. (2012). Este ensayo se basa en la reducción de nitrato a nitrito por el cadmio. Las muestras de plasma fueron desproteinizado mediante adición de ZnSO4 (75 mmol / l) y NaOH (55 mmol / l) soluciones. Tras la centrifugación, los sobrenadantes se recuperaron y se diluyeron por tampón de glicina (45 g / l, pH 9,7).Cadmio gránulos ( 2-2,5 g) se enjuagaron tres veces en agua desionizada y se arremolinaron en una solución de CuSO4 ( 5 mmol / l) en tampón de glicina - NaOH ( 15 g / l , pH 9,7 ) durante 5 min para activar . Gránulos de cadmio recién activado se añadieron a las muestras . Tras la agitación continua durante 10 min , las muestras se transfirieron a tubos etiquetados para la determinación de nitrito porreacción de Griess . Reactivo de Griess 1 ( 1 % sulfanilamida en 5 % phosphoricacid ) se añadió a los tubos de muestra y se incubó durante 10 min a temperatura ambiente mientras se protege de la luz . A continuación, reactivo de Griess 2 ( N napthylethylenediamine dihidrocloruro en agua ) se dispensó a todas las muestras y se midió la absorbancia a 540 nm dentro de 10 minutos en unespectrofotómetro (Corning 480 , USA ) . Las concentraciones de MDA de las muestras de plasma fueron medidos como un índice de la peroxidación de lípidos por el método TBA ( Nair y Turner , 1984 ) .
Una parte alícuota de sangre se recogió en tubos de microhematocrito para la medición de hematocrito . Los frotis de sangre también se prepararon en el portaobjetos de vidrio para la determinación del diferencialrecuento de leucocitos . Los frotis se tiñeron utilizando May -Grünwald y Giemsa ( Lucas y Jamroz , 1961 ) , aproximadamente de 2 a 4 horas después de la fijación de alcohol metílico. Un centenar de leucocitos , incluyendo granular ( heterófilos ) y no granulares (linfocitos) fueron contados y la relación de heterófilos a linfocitos : se calculó (H L). Todos los reactivos químicos se obtuvieron deSigma -Aldrich (Sigma -Aldrich , St. Louis, MO , EE.UU. ) .
 registro electrocardiográfico
Diez pollos por tratamiento fueron seleccionados al azar en el día 40 y los electrocardiogramas (ECG) se registraron mediante un auto- maticinstrument ( Cardiomax FX- 2111, Fukuda , Japón ) mientras normalizado a 10 mm = 1 mV con una velocidad de registro de 50 mm / s . Conduce II se registró para cadapollo, y el Se midió la amplitud de la T , R y S olas . medidas de la canal Pesos corporales finales se obtuvieron al final del ensayo de alimentación ( 42 días de edad ) . En el mismo día, cuatro aves por corral ( 16 aves por tratamiento) fueron sacrificados por la canal procesa-miento . Los datos obtenidos en el procesamiento incluyen peso en caliente eviscer - ATED cadáver sin piel, peso de lapechuga ( sin piel y sin hueso, Pectoral mayor y pectorales menores) , el peso del bazo , peso de la bolsa , y el peso de la grasa abdominal. Los corazones también se retiraron y los ventrículos se diseccionaron y pesaron para calcular la relación peso del ventrículo derecho - total (relación RV / TV) . La RV / TV es indicativo de pulmonar
  la hipertensión. Valora RV / TV superior a 0,25 se consi -Ered como la hipertensión pulmonar ( Izadinia et al, 2010 ; . Khajali , F. y Fahimi , 2010 ) .
mortalidad
Todas las mortalidades durante todo el experimento fueron necrop de tamaño para determinar la causa de la muerte. No obstante , Mor- tlities de ascitis ( RV / TV superiores a 0 . 29 ) sólo se consideraron para el análisis estadístico .
Análisis estadístico
Los resultados se compararon...