Bioedafologia

GUIÓN DE PRÁCTICAS DE EDAFOLOGÍA
Curso 2014/2015

Profesores:
Dr. Antonio Sánchez Sánchez
Departamento Agroquímica y Bioquímica

Edafología. Prácticas.

1. DETERMINACIONES

1.1.

PREPARACIÓN DE DISOLUCIONES:

Realizar los cálculos necesarios para preparar 1L de las siguientes disoluciones:
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
10.
11.
12.
13.
14.
15.
16.
17.
18.
19.
20.21.

HCl 5%v/v. (riqueza 33%)
H2SO4 6N (riqueza 96%, d =1,84Kg/L)
Molibdato amónico 10%p/v
Ácido ascórbico 10%p/v
Disolución de P de 1.000 mg/L partiendo de KH2PO4
-5
Disolución saturada de CaSO4 (Ks = 4,93 x 10 M)
Acetato sódico 1N
Etanol al 96%v/v a partir de etanol al 98%.
Acetato amónico 1N
Disolución de Na de 1.000mg/L partiendo de NaCl
Disolución de Ca de 1.000mg/L partiendo deCaCO3
Disolución de Mg de 1.000mg/L partiendo de MgSO4.7H2O
Disolución de K de 1.000mg/L partiendo de KCl
DTPA 5mM
CaCl2 0,01M
Trietanolamina 0,1M
Disolución Ni de 2.000mg/L partiendo de NiCl2.6H2O y posterior dilución para obtener una
concentración de 40mg/L
Disolución de Fe de 1.000mg/L partiendo de FeSO4.7H2O
Disolución de Cu de 1.000mg/L partiendo de CuCl2.2H2O
Disolución de Mn de1.000mg/L partiendo de MnSO4.H2O
Disolución de Zn de 1.000mg/L partiendo de ZnSO4.7H2O

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Edafología. Prácticas.
1.2.

DETERMINACIÓN DE LA CAPACIDAD DE INTERCAMBIO CATIÓNICO (Método de las
columnas):

El objetivo de esta determinación es valorar la disponibilidad de cationes que presenta el suelo.
Reactivos:
Sulfato amónico 0,5M
Reactivo A:
1. Tomar 22,5mL de trietanolamina ydisolver en agua hasta 300-400mL. Ajustar hasta pH 8,1
con HC (1:10).
2. Pesar 24,4g de BaCl2.H2O y disolver en unos 300 – 400mL de agua.
3. Mezclar ambas disoluciones y enrasar a un litro con agua destilada.
Reactivo B: Pesar 12,2g de BaCl2.H2O, disolver y enrasar a un litro con agua destilada.
Tanto para preparar los reactivos como para las operaciones de lavado en la percolación hay que usaragua destilada libre de CO2.
Procedimiento:
Se pesan 5g de suelo y se colocan en un tubo de percolación previamente cerrado con algodón y
con una goma en el final del tubo y la llave de cierre. Se añaden 5mL de agua destilada y se mantienen
en contacto con el suelo al menos durante 15 minutos con la llave de tubo cerrada. Transcurrido ese
tiempo abrir la llave, dejar caer el agua (si cae) ydespreciarla.
Poner bajo el tubo, un vaso de precipitado de 250mL conteniendo 5mL de HCl(1:1). Añadir en el
tubo 25mL de Reactivo A. Dejar percolar lentamente. Añadir a continuación 25mL de reactivo B y dejar
percolar del mismo modo. Añadir 15mL de agua destilada sin CO 2 y después realizar 1 lavado con 30mL
de agua destilada sin CO2.
Preparar un blanco con 25mL de reactivo A, 25mL de reactivo By 5 mL de HCl (1:1) y agua libre
de CO2 hasta aproximadamente 100mL de volumen total.
Poner los vasos de la muestra problema y del blanco en una plancha calefactora y calentar hasta
60-70ºC aproximadamente.
Precipitar con 15mL de disolución de sulfato amónico 0,5M.
Dejar enfriar y filtrar en papel gravimétrico, calcinar en crisoles tarados previamente durante 2h a
500ºC, dejar enfriar ypesar.
Cálculos:
+

El cálculo se hace por diferencia de peso entre la muestra del blanco y del problema en cmol ·Kg.
+

CIC = 172(B-M) (cmol ·Kg suelo)
B = P(Precipitado blanco + crisol) – P(crisol blanco)
M = P(Precipitado muestra + crisol) – P(crisol muestra)

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Edafología. Prácticas.

1.3.

MATERIA ORGÁNICA TOTAL (POR CALCINACIÓN):

Fundamento:
En el presente método sedetermina la materia orgánica por calcinación, tras extraer mediante
lavados sucesivos sustancias que no son materia orgánica (sales amónicas, carbonatos, etc,…).

Material:
Matraces Erlenmeyer de 200mL.
Agitador magnético.
Estufa con precisión de ±5ºC.
Desecador.
Crisoles de porcelana.
Embudos.
Balanza de precisión.
Horno mufla.
Papel de filtro sin cenizas.
Ácido nítrico.
Ácido...