DIAGNOSTICO EN PARASITOLOGIA

26/01/2012

Técnicas
parasitológicas
Dr. Moisés Callejas Apaza

Procedimientos de laboratorio
 Los

médicos, deben conocer
con exactitud las diferentes
técnicas para poder solicitarlas
e interpretar los diferentes
resultados adecuadamente.

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Tipos de análisis
 Técnicas

coproparasitológicas.
 Técnicas en parasitosis
sanguíneas y tisulares.
 Técnicas deanálisis de contenido
duodenal.
 Técnicas de análisis de flujo
vaginal.

Técnicas
Té i
coproparasitológicas

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MICROBIOLOGÍA CLÍNICA Y SANITARIA
CARACTERÍSTICAS GENERALES DE LOS PARÁSITOS

HELMINTOS
Fasciola hepatica.
TREMATODES
Schistosoma spp.
CESTODES

Taenia spp.
Echinococcus
Granulosus.

NEMATODES

Enterobius vermicularis

Facultad de MedicinaEscuela de Medicina

Dado que la sintomatología de estas
q
g
parasitosis es poco característica, ha de
confirmarse el diagnóstico por medio
del análisis de laboratorio.
 El método más simple es el estudio de
las
l materias f
t i fecales, pero existen
l
i t
además algunos procedimientos
complementarios.


3

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Obtención de la muestra fecal
La muestra emitidaespontáneamente
es la muestra óptima para el examen
coprológico.
 También se pueden usar muestras
obtenidas mediante:


Rectoscopía
 Tacto rectal
 Aspirado rectal


Muestras inadecuadas
Las que se han mantenido por más de
un día a temperatura ambiente.
 Las obtenidas después de un estudio
radiográfico del tubo digestivo en el que
se utilizó bario
bario.
 Las que presentan grancantidad de
algunas sustancias que se han ingerido
con fines terapéuticos (v.gr. Aceite o antidiarreicos


con bismuto).

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Laxantes
No han de utilizarse de rutina.
 En caso de usarse, debe preferirse el
sulfato de sodio.
 En términos generales, nunca, deben
g
,
,
emplearse laxantes aceitosos ya que se
eliminan en forma de gotas, las cuales
interfieren con elanálisis microscópico.


Facultad de Medicina
Escuela de Medicina

N° de muestras


Lo óptimo son tres muestras en días
diferentes, esto debido a la eliminación
irregular de quistes o larvas de algunos
parásitos, en vista de lo cual una sola
muestra no ti
t
tiene un 100% d
de
sensibilidad.

5

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Envío


Las muestras deben enviarse al
laboratorio cuanto antespara su
análisis, esto por cuanto de no ser así,
los trofozoítos de protozoarios pierden
movilidad y se pueden alterar sus
ilid d
d
lt
características y además se incuban
algunos huevecillos de helmintos lo que
dificulta su diagnóstico.

Conservación


En caso de que la muestra no pueda
ser
enviada
inmediatamente
al
laboratorio, debe emplearse algún
método
de
conservaciónpara
garantizar la calidad del diagnóstico.

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Refrigeración
Cuando la conservación se debe hacer
por unas horas o hasta un día.
 Colocar el frasco con la muestra en el
refrigerador,
refrigerador nunca en el congelador
congelador.


Preparaciones selladas
Se coloca la muestra entre porta y
cubreobjetos y se sella el borde del
cubreobjetos con vaselina, Barniz deuñas o Bálsamo de Canadá.
 Se obtiene así una preparación que
puede durar unas horas.


7

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Formalina
Se mezclan ca. 3 g de heces por cada
10 ml de formalina al 10%.
 Se preservan bien los huevecillos de
helmintos y los quistes de protozoarios.


TÉCNICAS DE CONCENTRACIÓN

GOTA GRUESA
Es una técnica de mejor
rendimiento que el frotis
sanguíneo, ya que se examinauna mayor cantidad de sangre
(varias gotas) en el caso de los
plasmodios de la malaria, estos
se observan libres,

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METODO DE STROUT
Es una técnica simple y de
buena sensibilidad en los casos
agudos de enfermedad de
Chagas se extraen 5ml de
sangre sin anticoagulante, se
deja coagular y se retira el
coagulo espontáneamente se
recoge el sobrenadante y se...