Ciencia

Metodologia
* Recoger muestras.
* Hacer el extendido en espiral.
* Dejar secar a temperatura ambiente o fijarlas utilizando un mechero.
* Fijar la muestra con metanol durante unminuto o al calor (flameado 3 veces aprox.)
* Agregar azul violeta (cristal violeta o violeta de genciana) y esperar 1 min. Todas las células gram positivas y gram negativas se tiñen de colorazul-purpura.
* Enjuagar con agua.
* Agregar lugol y esperar entre 1 minuto.
* Enjuagar con agua.
* Agregar acetona y/o alcohol y esperar de 8 a 15 segundos aproximadamente (parte critica de lacoloracion).
* Enjuagar con agua.
* Tinción de contraste agregando safranina o fucsina básica y esperar 45 segundos. Este tinte dejará de color rosado-rojizo las bacterias Gram negativas.Para observar al microscopio óptico es conveniente hacerlo a 1000x con aceite de inmersión.

Bacterias Escherichia coli (Gram negativas) vistas al microscopio tras ser teñidas con la tinción deGram.

Bacterias Clostridium perfringens (Gram positivas).

Bacterias Gram positivas de Bacillus anthracis (bacilos morados) que producen una enfermedad llamada Carbunco, encontrados en una muestraliquido cerebroespinal. Si hubiera una especia de bacteria Gram negativa apareceria de color rosa. El resto son leucocitos atacando la infección.

Una tinción Gram en la que observamos un mezclado deStaphylococcus aureus (Coco Gram positivo) y Escherichia coli (bacilo Gram negative)
La tinción de Gram o coloración de Gram es un tipo de tinción diferencial
Tinción de Ziehl-Neelsen

TécnicaEsta técnica puede realizarse tanto en muestras histológicas como citológicas.
Variante histológica
Para demostrar la presencia de BAAR en cortes de tejido en parafina.Los reactivos necesarios parasu realización son los siguientes:
1. ácido periódico 58%
1. carbol fucsina de Ziehl culina(fucsina fenicada). Preparar mezclando en el orden dado:
1. 0,5 g fucsina básica
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