Diabetesfor

LABORATORIO DE INGENIERÍA BIOQUÍMICA III
PRÁCTICA No. 4
DETERMINACION DE LA DISTRIBUCION DE TIEMPOS DE RESIDENCIA (DTR) EN REACTORES
INTRODUCCIÓN
Esta práctica se aplica un pulso de trazador y se mide la respuesta de salida en los reactores en flujo continuo. Los alumnos aprenden una técnica usada en la industria y además ven la diferencia entre los reactores ideales y no ideales. La DTR seutiliza para encontrar el patrón de mezclado en un reactor continuo e indica los tiempos de residencia de un compuesto a través de un recipiente. En base a las curvas de DTR se pueden determinar si el flujo es de tipo pistón o de mezcla completa y si en el recipiente se encuentran zonas muertas o un mezclado deficiente. En la DTR influye el estado de agregación del material circulante, sutendencia a agruparse y la velocidad a la que el compuesto es mezclado en el recipiente. La DTR se puede calcular a través de una función de respuesta a un impulso recibido, que experimentalmente es la introducción de una cantidad conocida de un trazador al sistema. Y se considera como el área bajo la curva de la grafica de concentración conocida de un trazador contra el tiempo. Esta curva puede serintegrada como una curva de distribución normal recordando que el área bajo la curva (A) es siempre la unidad. Es conocida como curva “E” y es la que ha de tenerse en consideración para el flujo no ideal.

El impulso recibido puede ser un escalón en dónde hay un aumento que se mantiene constante de la concentración del trazador (C) y también del pulso en donde una cantidad determinada de trazador seintroduce una sola vez de manera instantánea.En este caso el área bajo la curva se define como
, la cual dividida entre el área bajo la curva queda como , donde Q es igual al área bajo la curva de una gráfica de concentración contra tiempo. Se puede expresar como es decir el área bajo la curva es igual a la concentración del trazador detectado durante un espacio diferencial de tiempo. Esto semuestra gráficamente en la siguiente figura.
















OBJETIVO
Encontrar la distribución de los tiempos de residencia (DTR) en un reactor continuo y determinar el patrón de flujo en el prototipo que se utilizara durante una fermentación continua para la práctica siguiente.


MATERIALES


2
Celdas de Acrílico (Profesor)
1
Horadador
1
Espectrofotómetro
1Microespátula
1
Gradilla
1
Bomba Peristáltica (profesor)
22
Tubos de Ensaye (chicos)
1
Parrilla Eléctrica
1
Probeta de 50 mL
1
Soporte Universal
2
Vaso de precipitados de 1000 mL
2
Tubo de Vidrio
1
Canastilla para Autoclave y Válvula

Papel Seda
1
Micropipeta de 100-1000L

Puntas para Micropipeta (profesor)
1
Micropipeta de 10-100L

Parafilm
1
Piceta con agua destiladaMangueras de látex
1
Piceta con alcohol
2
Pipetas pasteur
1
Vortex

REACTIVOS
1
Matraz aforado de 25 mL

Azul de Metileno
1
Palangana

Agar-Agar
1
Matraz Kitazato de 1 L

NaCl
1
Matraz Erlenmeyer de 2 L

ALUMNOS
2
Tapones de Hule
2
Jeringas de 5 mL
1
Agitador Magnético
4
Cinturones de plástico
1
Cristalizador

Tijeras
2
Nuez de sujeción

Franela
2
Pinzasde Tres dedos

Maskintape y Plumón con tinta Indeleble

PREPARACIÓN DE SOLUCIONES (traer cálculos de la soluciones)
(UN ALUMNO DE CADA EQUIPO SE PRESENTARA AL LABORATORIO PREVIO A LA PRACTICA)

1. Preparar 25mL de Azul de Metileno (5 mg/mL)
2. Preparar 1000 mL de Solución de Cloruro de sodio al 0.81% estéril (solución isotónica)
3. Inmovilización de Células: Mezclar el contenido de unmatraz semilla de hongo (que el profesor proporcionará) con 100 mL de solución isotónica estéril en el matraz de 250 mL. En un vaso de precipitados de 1000 mL poner a ebullición 250 mL de agua destilada y disolver poco a poco 7.5 g de Agar, sin que se forme espuma. Dejar enfriar hasta 50ºC en un baño a temperatura controlada y llevar el inoculo a esta misma temperatura. Mezclar suavemente ambos en...