Fasdsad

GLUCOSA

Introducción
La glucosa oxidasa (GOD) cataliza la oxidación de glucosa a ácido glucónico. El peróxido de hidrógeno (H2O2), producido se detecta mediante un aceptor cromogénico de oxigeno, fenol-ampirona en presencia de peroxidasa (POD):
β-D-Glucosa + O2 + H2O Ácido glucónico + H⎯⎯⎯→⎯GOD2O2
H2O2 + Fenol + Ampirona Quinona + H⎯⎯⎯→⎯POD2O
La intensidad del color formado es proporcionala la concentración de glucosa presente en la muestra ensayada
La glucosa es la mayor fuente de energía para las células del organismo; la insulina facilita la entrada de glucosa en las células.
La diabetes mellitus es una enfermedad que cursa con una hiperglucémia, causada por un déficit de insulina1,5,6.
El diagnóstico clínico debe realizarse teniendo en cuenta todos los datos clínicos y delaboratorio.
Indicaciones del paciente
Presentarse en ayuno mínimo de 8 horas
No realizar ejercicio antes de la toma de muestra
Material
-Equipo de flebotomía
-Tubo sin anticoagulante o con gel separador (tubo con tapón rojo o amarillo)
- Espectrofotómetro o analizador para lecturas a 505 nm.
- Cubetas de 1,0 cm de paso de luz.
- Equipamiento habitual de laboratorio.

Muestra requeridaSuero libre de hemólisis1 y LCR.
El suero debe separarse lo antes posible del coágulo.
Estabilidad: La glucosa en suero es estable 3 días a 2-8º
Procedimiento
1. Se verifican los datos del paciente
2. Se le pide que tome asiento y este en una posición cómoda
3. Se rotula el tubo con los datos correctos del paciente
4. Preparar la jeringa o equipo vacutainer, indicándole alpaciente que el material es nuevo y desechable
5. Se coloca el torniquete para la localización de la vena a punzar
6. Se realiza la asepsia en el lugar a punzar de arriba hacia abajo sin regresar la torunda hacia arriba para no contaminar
7. Dejar secar al aire
8. Introducir la aguja con una inclinación aproximada de 15° del brazo del paciente con el bizel hacia arriba y con cuidado deno ponchar la vena.
9. Si se toma con equipo vacutainer introducir el tubo, si es con jeringa jalar suavemente el embolo para no hemolizar la muestra
10. Retirar el torniquete
11. Quitar el tubo, colocar una torunda alcoholada arriba del lugar de punción y retirar la aguja, se aplica presión en el sitio puncionado para parar el sangrado
12. Se le dan las indicaciones al pacientede cuando estarán listos sus resultados
13. Se centrifuga la muestra a 2,500 rpm para separar el suero
14. Seguir el procedimiento del inserto del reactivo que esta siendo utilizado para el estudio.
Realización del estudio
1. Condiciones del ensayo:
Longitud de onda: . . . . . . . . . . . . . . . 505 nm (490-550)
Cubeta:. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. .1 cm paso deluz
Temperatura. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 37ºC / 15-25ºC
2. Ajustar el espectrofotómetro a cero frente a agua destilada.
3. Pipetear en una cubeta:

| RT(mL) | Patrón(μL) | Muestra(μL) |
Blanco | 1.0 | -- | -- |
Patrón | 1.0 | 10 | -- |
Muestra | 1.0 | -- | 10 |

4. Mezclar e incubar 10 minutos a 37ºC ó 30 min a temperatura ambiente (15-25ºC).5. Leer la absorbancia (A) del Patrón y la muestra, frente al Blanco de reactivo. El color es estable como mínimo 30 minutos.

CÁLCULOS Patrón)A(Muestra)A(x 100 (Conc. Patrón) = mg/dL de glucosa en la muestra
VALORES DE REFERENCIA:
Suero :
60 – 110 mg/dL
INTERFERENCIAS
No se han observado interferencias con: hemoglobina hasta 4 g/L, bilirrubina hasta 20 mg/L, creatinina hasta 100 mg/L,galactosa hasta 1 g/L.
Se han descrito varias drogas y otras substancias que interfieren en la determinación de la glucosa3,4.
Niveles aumentados en:
Estrés quirurgico
Traumatismos
Anestesia general
Accidente cerebrovascular
Infarto de miocardio
Diabetes mellitus
Insuficiencia pancreática
Enfermedad de cushing
Feocromocitoma
Hipertiroidismo
Uso de fármacos con diuréticos tiazidicos,...