Fijadores y/o conservadores

El conservador mas utilizado en el laboratorio por económico y eficaz es la
Solución de formalina al 10 %
también conocido como formol , aldehído fórmicoo formaldehido.Sin embargo acontinuación se hará referencia a diversos conservadores quetambién se utilizan ampliamente dentro del laboratorio de Parasitologia :
I.PAF (phenol-alcohol-formol):
UTILIDAD:
Conserva las estructuras de losparásitos (trofozoítos, quistes, huevos ylarvas), pudiéndose incluso observarse en semanas o meses (6) sin que hayaocurrido deterioro alguno. Es recomendable mantener el fijador preparado enfrascoscolor ámbar. Además, permite observar el material al microscopio.
MATERIAL:
Fijador PAFTionina o azure AAgua destilada.Hisopo.Tubos de centrífuga de 15 mL.Aplicadores.Tritón NE. Éter.Embudo devidrio.Solución fisiológica
PROCEDIMIENTO:
a)La muestra de heces se mezcla con el fijador en un recipiente en laproporción 1:1.b)Para la observación microscópica. Mezclar bien la muestra fijada en PAF yconayuda de un embudo y una gasa doblada en un tubode 15 mL, colar de 3 a 4 mL del material fijadoc)Agregar solución salina hasta un volumen de 12 mL y centrifugar a 1800r.p.m. por 3 minutos.
d)Decantar el sobrenadante y obtener un sedimento de 0,5 mL; si es menor,agregar de la muestra filtrada una cantidad suficiente y volver a centrifugar para obtener el volumen del sedimento deseado.e)Decantarel sobrenadante y completar 12 mL con solución fisiológica,emulsionar con el aplicador centrifugar a 1800 r.p.m. por 3 minutos.f)Repetir el centrifugado y lavar de 2 a 3 veces más.g)Agregar 2 mL desolución fisiológica al sedimento final, emulsionar yobtener una gota del sedimento con una pipeta Pasteur y colocarla en unalámina portaobjetosh)Agregar una gota del colorante tionina o azure A, cubrircon una laminillacubreobjetos y examinar al microscopio.


i)
Al sedimento emulsionado y sobrante del procedimiento anterior, agregar 10 mL de solución fisiológica y una gota de Triton NE....