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1. http://www.ispch.cl/sites/default/files/documento/2010/04/Instructivo%20Muestra%20Malaria%202012.pdf
2. http://www.scielo.org.ar/pdf/abcl/v38n3/v38n3a11.pdf
El método de Baermann
Este método fue ideado para la búsqueda de larvas de nemátodos fitopatógenos en muestras de suelo y posteriormente fue adaptado para el diagnóstico de S. stercoralis. El método consiste en una concentraciónbiológica de larvas, utilizando su termotropismo e hidrotropismo positivos, lo que hace que cuando la muestra de heces se pone en contacto con agua con una temperatura entre 37 y 40 °C las larvas migren de las heces al agua. Las 2 versiones más empleadas de esta metodología son las que utilizan un embudo o un balón para contener el agua. En la primera, la muestra se deposita en un cedazo recubiertode gasa que se coloca en contacto con la superficie del agua contenida en un embudo, cuya salida tiene una manguera cerrada con una pinza. En la segunda versión, las heces se aplican en un apósito de gasa que se introduce en un balón que se llena con agua. En ambos casos, es ideal centrifugar el agua y buscar las larvas en el sedimento. Una versión muy económica de este método fue ideada porGraeff-Texeira y otros, quienes diseñaron un dispositivo con una botella plástica desechable de refresco gaseoso y un globo de goma. Cortaron la botella a un tercio de la boca para construir un embudo el cual sellan con el globo de goma, llenan el embudo con el agua, lo colocan invertido sobre el resto de la botella que sirve como soporte y sitúan la muestra de heces como se indica en la versiónoriginal del método. Luego de la incubación recogen el agua del globo con las larvas.
Otro método diagnóstico coproparasitológico lo constituye el de Harada-Mori. Este proceder, de sensibilidad reconocida a escala universal, tiene la ventaja de permitir la diferenciación de larvas de helmintos.
3. laboratorio
hemograma
eosinofilia
(eosinofilia > 400 eosinófilos/mm)
examen parasitológico dedeposiciones
cristales de Charcot Leyden (restos de eosinófilos)
ooquistes
se observan solamente cuando parásito inicia su etapa de gametogonia y el paciente se está recuperando recuperando
http://www.binasss.sa.cr/revistas/rccm/v7n2/art14.pdf
http://www.scielo.org.bo/pdf/rbp/v47n3/a08v47n3.pdf
http://www.higiene.edu.uy/parasito/teo09/protz.pdf
Para el diagnóstico de las diferentes especiesde
Cryptosporidium se realizan coloraciones especiales
como la técnica de Ziehl-Neelsen la cual tiene aproxi-
madamente un 30% de sensibilidad. Adicionalmente,
se puede emplear la técnica de coloración de Kinyoun.
Ambas técnicas aumentan su sensibilidad cuando se
utilizan de forma seriada y son acompañadas con
métodos de concentración como las técnicas de flo-
tación de Sheatter y Faust (4,6).

En la actualidad, para el diagnóstico de la criptos-
poridiosis existen otras técnicas como son: la biop-
sia intestinal, la técnica ELISA (sensibilidad del
80-90%), inmunofluorescencia indirecta o técnicas
moleculares como reacción en cadena de la polime-
rasa. El inconveniente con estas técnicas es que son
invasivas o costosas y frecuentemente, por su baja
demanda, no son incluidasen los laboratorios clíni-
cos como alternativas para ayudar al diagnóstico (1,
4, 6, 13, 16, 19).

Para la realización de un buen diagnóstico diferencial
con Cyclospora spp es necesario la utilización del micró-
metro ocular, ya que los ooquistes de Cryptosporidium
spp miden de 4-6 micras y los de Cyclospora sp de 6-8
micras (7, 12, 13, 14, 20, 21). El diagnóstico dife-
rencial de estosparásitos contribuye no solamente
a aclarar la epidemiología de estas patologías en las
diferentes regiones, sino también al establecimiento
de tratamientos oportunos que ayuden a la mejoría
de los pacientes. Desafortunadamente muy pocos
laboratorios clínicos en Colombia tienen micróme-
tro de ocular y en el departamento del Cauca tan
solo está presente en la Universidad del Cauca.

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