biologia

RESUMEN
En el trabajo práctico realizado, se observó seis tipos de muestras contenidas en portaobjetos, a través del microscopio óptico, con el objetivo de reconocer distintos tipos de células, organelos y/o estructuras.
Las primeras cuatro muestras de células vegetales, contenían cortes finos de: corcho, papa, cebolla y geranio. Las dos últimas células eran de tipo animal, obtenidas de unamuestra sanguínea y del epitelio bucal, esta última a través de la extracción de la mucosa de la cavidad bucal con un cotón estéril, y posteriormente extendiéndola en un frotis.
Las observaciones de estas muestras fueron realizadas mediante un procedimiento regular, en el cual cada muestra por separado, se situaba en el centro del portaobjetos, agregándole una gota de agua o reactivo, según eltipo de material biológico, y posteriormente cubriéndola con el cubre objetos. Luego se acomodaba la muestra por medio del macrometrico y micrométrico para lograr el enfoque adecuado esta.
Al finalizar el trabajo practico, se logró distinguir las distintas estructuras que forman una célula, ya sea animal o vegetal y así diferenciar los tipos de organelos que contiene cada una de estas.INTRODUCCIÓN
MATERIALES Y METODOS
En dependencias de la Universidad Austral de Chile, sede Puerto Montt, Edificio de salud, se dio inicio al cuarto laboratorio práctico de biología celular. Tema de estudio, Compartimentalización celular.
Materiales utilizados:
1.- Observación de células vegetales.
Microscopio óptico.
Porta y cubreobjetos.
Pipeta de trasvasije.
Material biológico: Papa,Cebolla, Geranio y Corcho.
Reactivos: Lugol o yodo, Azul de Metileno.
2.- Observación de células animales.
Microscopio óptico.
Porta y cubreobjetos.
Pipeta de trasvasije.
Cotones estériles.
Material biológico: epitelio bucal.
Reactivos: Azul de Metileno.
Portaobjetos con sangre ya fijadas.
Descripción metodología utilizada:
1.- Observación de células vegetales.
1. a. Técnica para células decorcho
Colocamos el corte de corcho sobre un portaobjetos.
Agregamos una gota de agua.
Cubrimos la muestra con un cubre – objeto, evitando la formación de burbujas de aire.
Colocamos la muestra ya preparadas sobre la platina del microscopio verificando que esta quede centrada.
Encendemos la fuente de luz del microscopio y ajustamos la lámpara.
Abrimos y subimos el diafragma del condensadoral máximo.
Verificamos que la muestra esté completamente iluminada.
Colocamos el objetivo en el aumento 10X; en el eje óptico del instrumento.
Observamos a través de los oculares y con ayuda del macrometrico, acercamos la placa para mejorar la nitidez de las imágenes, asimismo, utilizamos el micrométrico para el foco de esta.
Corregimos la iluminación, bajando el condensador para obtener elmáximo contraste sobre el campo de las muestras.
Observamos sobre todo los bordes del corte, donde habitualmente es más delgado.
1. b. Técnica para células de papa.
Depositamos el corte de papa en un portaobjeto y la dejamos secar completamente.
Con ayuda de una pipeta de trasvasije, tomamos una gota de Lugol o yodo, y luego teñimos la muestra.
Dejamos actuar dos minutos.
Colocamos el cubre –objetos sobre la muestra.
Colocamos la muestra ya preparadas sobre la platina del microscopio verificando que esta quede centrada.
Encendemos la fuente de luz del microscopio y ajustamos la lámpara.
Abrimos y subimos el diafragma del condensador al máximo.
Verificamos que la muestra esté completamente iluminada.
Colocamos el objetivo en el aumento 10X; en el eje óptico del instrumento.Observamos a través de los oculares y con ayuda del macrometrico, acercamos la placa para mejorar la nitidez de las imágenes, asimismo, utilizamos el micrométrico para el foco de esta.
Corregimos la iluminación, bajando el condensador para obtener el máximo contraste sobre el campo de las muestras.
Luego una vez identificada las muestra, giramos el sistema de revolver, para colocar el objetivo 40X....