Tincion Para Baar
Trinidad Sabalete Moya Centro de Enfermedades Infecciosas y Salud Internacional Granada- IAMA Málaga FUNDACIÓN IO
Objetivos
Determinar la ácido alcoholresistencia de las micobacterias en muestras clínicas Diagnostico de pacientes bacilíferos Control del tratamiento
Tinciones
Ziehl-Neelsen
1) 2) 3) 4) Colorante 1º: fucsina fenicada(carbolfucsina) Contracolorante: azul de metileno o verde malaquita Visualización con x1000 BAAR de 1-10µm de largo y 0.2-0.6µm de ancho
Variante de Kinyoun
1) Cuerpos tensioactivos sin necesidad de calentarel colorante
Auramina
1) Colorante 1º:fluorocromo 2) Los microorganismos bajo luz UV aparecen fluorescentes 1) Visualización x250
Tinción de Gram:bacteria gram+ débil o como bacilos incolorosEsquema de la pared celular Escasa permeabilidad: Acido alcohol resistencia
1-lípidos externos 2-ácido micólico 3-polisacáridos (arabinogalactano), 4-peptidoglicano (moléculas deN-acetilglucosamina y ácido N-glucolilmurámico ), 5-membrana plasmática 6-lipoarabinomanano (LAM), 7-fosfatidilinositol manosido
Material necesario para tinción de Ziehl Neelsen
PortaCarbolfucsina Decolorante (Alcohol ácido) Azul de metileno Aceite de inmersión Fuente de calor
Preparación del frotis
Porción de saliva Porción purulenta
Extensión de la muestra
Grosoradecuado
Fijación
AAR
No AAR
carbolfucsina decolorante
Tinción de contraste
10
Carbol fucsina
Calentar hasta la emisión de vapor
Mantener el calor 10 minutos Evitar laebullición Dejar enfriar
Resultado del tiempo de carbol fucsina en la intensidad de AAR
2 min 3 min
5 min
13
Lavar con agua
Decoloración con alcohol ácido
Máximo 3 minutos Lavar con aguaposteriormente
Tinción de contraste: azul de metileno
1 MINUTO
Enjuagar
Secado
Examen sistemático de la extensión
19
100 campos. 1000x
Buena calidad de la tinción
BAAR...
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