Callogenesis de anturio

PROYECTO




Inducción y cultivo de callo in vitro de Anthurium andreanum var giganteum



I. INTRODUCCION

El Anthurium andreanum “anturio”, pertenece a la familia de las Araceae, originario de zonas tropicales de América del Sur, es una planta ornamental y tienen gran importancia económica a nivel mundial debido al color variado de sus espatas. Además, es usado como extractosvegetales en enfermedades como el cáncer e inflamaciones
El callo son células totipotentes que surge debido a heridas producidas por cortes a los explantes que han sido colocados en un medio de cultivo semisólido para su inducción, donde se da la proliferación de células del parénquima.
La propagación tradicional por semillas de Anturio es lenta, además de ser infectados por Xanthomonascampestrispv. dieffenbachiae. Según, Rivero et al, 2008 para controlar estos problemas se han realizado varios trabajos de propagación de anturio in vitro, usando explantes de segmentos foliares de plantas sobre un medio de cultivo MS modificado y suplementado con 2,4-D, BAP y kinetina. Actualmente, se considera una alternativa rápida y eficiente que permite la obtención de plantas libres de enfermedadespatógenas.
La planta Anthurium andreanum requiere aproximadamente 3 años para su floración, que es cuando alcanza su periodo comercial. Por eso desde el punto de vista económico, obtener variantes somaclonales de Anthurium andreanum a través de un cultivo in vitro de callo sería muy rentable, ya que al obtener flores más vistosas, aumentaría las ganancias en la venta de esta planta ornamental.
Elpresente trabajo tiene como objetivo lograr la inducción y cultivo de callo in vitro de Anthurium andreanum giganteum “anturio rojo”.


II. ANTECEDENTES:


ESPINOSA A. et al (2012): evaluaron el efecto del tipo de explante y la concentración de 2,4- D en la formación de callos, en Morus alba L. El incremento del tamaño del callo se dio a concentraciones de 1,0 y 2,0 mg.L-1 de 2,4- D.KHORRAMI R. et. al (2012) Realizaron un protocolo para la propagación de Anthurium andreanum en presencia de IBA, NAA, 2,4-D, KIN y BA con el objetivo de inducir el callo y la organogénesis. Usaron segmentos de hoja y peciolo donde se observó la mayor producción de callo después de 65 días en MS con 0.5 mg/L NAA + 3 mg/L BA en condiciones de oscuridad. El desarrollo de brotes y plántulas se iniciódespués de 6 a 8 semanas a partir de callos.

FARSI, M. et al (2012) Establecieron un protocolo para la propagación in vitro de regeneración indirecta de Anthurium anderanum cultivar Terra. El callo de mayor peso fresco y seco se produjo en medio MS modificado con 0.1 mg/L de 2,4-D y 1.5 mg/L de BAP, demostraron que el uso único de 2,4-D no inducia el callo mientras BAP si lo inducia; sinembargo tuvieron más éxito usando ambos. Para el periodo de regeneración lo callos inducidos fueron transferidos a MS sin reguladores de crecimiento, se formaron brotes luego de 6 semanas; de igual forma para la formación de raíces se transfirió al medio MS modificado sin reguladores de crecimiento.


OSCULLO M. (2011) Estableció un protocolo de organogénesis indirecta in vitro de Anthuriumandreanum a partir de secciones de la hoja desarrollándolo en tres fases. Primero la desinfección de las hojas obteniendo menor contaminación a concentración 1% de cloro por 10 min. Segundo, la introducción de las hojas en 6 tratamientos diferentes en base a sales de MS y BAP, obteniendo mayor formación de callos en el medio con 50% de macronutrientes y 1 ppm de BAP. Tercero fuela multiplicación delos brotes en 4 tratamientos a diferentes concentraciones de BAP.

GUEVARA M, LÓPEZ G, ORTEGA R., DÍAZ K. (2010) Analizaron la capacidad de crecimiento in vitro de Anturium andreanumde la variedad Anthapck empleando un medio enriquecido con extracto de inflorescencias de crisantemo (Chrysanthemum morifolium) a distintas cantidades de 100 μL, 200 μL y 300 μL, mostrando un mejor resultado...