metabolismo de lipidos

PROGRAMA EXPERIMENTAL DE QUÍMICA ORGÁNICA III (1521) PARA QFB
No.
EXPERIMENTO
-
MEDIDAS DE SEGURIDAD EN EL LABORATORIO
1
Hidrólisis de Carbohidratos
2
Aislamiento de Aceite de Almendras Dulces
3
Obtención de Emulsina
4
Reacciones de Adición a Dobles Ligaduras
Determinación del grado de insaturación de un aceite
5
Seminario de Discusión
6
Síntesis de Pirroles:
Obtención del1-Fenil-2,5-dimetilpirrol
7
Formación de Indoles.
a) Síntesis de Fischer: Obtención de 1,2,3,4-Tetrahidrocarbazol
b) Obtención de índigo 2-(1,3-Dihidro-3-oxo-2H-indol-2-ilid-eno)-1,2-dihidro-3H-indol-3-ona
8
Formación de Piridinas. Síntesis de Hantzsch
Obtención de 3,5-Dicarbetoxi-2,6-dimetil-1,4-dihidropiridina.
9
Formación de Cumarinas. Reacción de Pechmann- Duisberg
Obtención de la-Metilumbeliferona ó 7-Hidroxi-4-metilcumarina
10
Formación Imidazoles:
Obtención de la alantoína (2,5-dioxo-4-imidazolidinil urea)
11
Aislamiento de la cafeína a partir de:
té negro,
bebidas de cola y energéticas,
Café tostado.
12
Seminario de Discusión
13
REPOSICION




EXPERIMENTO No. 1

HIDRÓLISIS DECARBOHIDRATOS



OBJETIVOS

a) Realizar la hidrólisis e inversión de la sacarosa y comprobar ésta mediante pruebas químicas y utilizando un polarímetro.
b) Hidrolizar almidón, que es un polisacárido, y comprobar su hidrólisis mediante pruebas químicas.
c) Conocer el fundamento del polarímetro y su manejo

ANTECEDENTES

1. Formación de acetales (adición de alcoholes a carbonilos).
2.¿Qué grupo funcional está presente en los azúcares reductores y por qué se les da este nombre?
3. Mencione algunos de los reactivos oxidantes más empleados en el análisis de azúcares.
4. Ejemplos y definición de disacáridos y polisacáridos.
5. Reacción de hidrólisis ácida que experimenta la sacarosa y el almidón y productos que se forman.
6. ¿Cuál es la diferencia estructural entre el“almidón soluble” y el “almidón insoluble”?
7. ¿Cuál es la causa del color que se produce entre el almidón y el yodo?
8. Partes fundamentales de un Polarímetro.
9. Revisar la preparación del reactivo de Benedict

MATERIAL

15
Tubos de ensaye
1
Espátula.
1
Pipeta de 5 mL.
1
Probeta de 25 mL.
1
Erlenmeyer de 125 mL.
1
Vaso de pp. de 400 mL.
1
Gradilla.
1
Pinzas p/tubo de ensayo.1
Vidrio de reloj.
1
Mechero c/manguera.
1
Anillo metálico.
1
Tela de alambre c/asbesto.
1
Recipiente eléctrico Baño María.
1
Pinza de 3 dedos c/nuez.
1
Recipiente de peltre.
1
Pipeta de 1 mL.
1
Polarímetro.



REACTIVOS

10 mL
Solución de sacarosa al 10 %.
1 mL
Fenolftaleína en solución.
1 mL
Solución de HCl al 20% preparada por el profesor.


5 mL
Solución deNaOH al 2 %.
10 mL
Reactivo de Benedict.
2 mL
Reactivo de yodo-yoduro.
0.3 g
Almidón soluble.
3mL
HCl concentrado.
2 mL
NaOH al 10%.

PROCEDIMIENTO

1- Hidrólisis de la sacarosa (inversión)

Coloque en un tubo de ensaye 3 mL de una disolución de sacarosa al 10 %, agregue 0.5 mL ácido clorhídrico al 20 % (Nota 1) y caliente en baño maría durante 10 minutos.
Enfríe la disolucióny neutralice con NaOH al 2% usando Fenolftaleína como indicador (puede utilizar papel pH).
Divida la disolución en 2 partes iguales y haga las siguientes pruebas:


-Prueba de Benedict. Coloque 1 mL de la disolución de Benedict y agregue 1 mL de la disolución de sacarosa invertida, caliente a ebullición y deje enfriar a temperatura ambiente, (Nota 2).
Haga la misma prueba para una muestrade la disolución de sacarosa al 10%, observe las pruebas y anote sus resultados.

2- Determinación de la rotación específica de la sacarosa y del azúcar invertido

Prepare una disolución con 1 g de sacarosa en 10 mL de agua, y úsela para llenar el tubo del polarímetro de modo que no queden burbujas. Identifique este tubo con la letra A y mida su rotación óptica.
Prepare otra disolución...