reconocimiento de los biolementos

1. PROCEDIMIENTOS PRACTICA 4.

1.1 CARBOHIDRATOS:

1.1.1 RECONOCIMIENTO DEL ALMIDON:
Numera tubos de ensayo del 1 al 6
En el tubo 1disuelve almidón en un poco de agua, añade 3 gotas de solución Lugol. Observa y anota los resultado
Calentar suavemente, sin que llegue a hervir, hasta que pierda el color
Enfriar el tubo de ensayo al grifo y observar cómo, a los 2-3 minutos reaparece el color azul-violáceo

En los tubos restantes distribuye los alimentos de la siguiente manera:
a) En el número 2 arroz con agua

b) En el número 3 papa con agua

c) En el número 4 jugo de naranja

d) En el número 5 leche

e) En el número 6 huevo

Agrega tres gotas de solución de Lugol en cada caso, observa lo que sucede y regístralo a continuación


1.1.2 ESTUDIO DE AZUCARES REDUCTORES:
Tomar 5 tubos deensayo colocar a c/u 3ml de la solución de glucosa, maltosa, lactosa, fructosa o sacarosa (según lo indique el profesor
Añadir 1ml de solución de Fehling A (contiene CuSO4) y 1ml de Fehling B (lleva NaOH para alcalinizar el medio y permitir la reacción)
Calentar los tubos a la llama del mechero hasta que hiervan
La reacción será positiva si la muestra se vuelve de color rojo y será negativa siqueda azul o cambia a un tono azul-verdoso
Observar y anotar los resultados de los diferentes grupos de prácticas con las distintas muestras de glúcidos
Observar la formación de precipitado rojo ladrillo (CH2O), en baño de agua fría.

1.1.3 HIDROLISIS DE LA SACAROSA:
Tomar 3ml de solución de sacarosa y añadir 10 gotas de ácido acético diluido
Calentar a la llama del mechero durante unos 5 minutosDejar enfriar
Neutralizar añadiendo 3ml de solución alcalina hidróxido de sodio 20%
Realizar la prueba de Fehling como se indica en el experimento 2.(estudio de azucares reductores)
Observar y anotar los resultados

1.2 LIPIDOS:

1.2.1 SAPONIFICACION:
Colocar en un tubo de ensayo 2ml de aceite y 2ml de NaOH al 20%

Agitar y colocar el tubo al baño María de 20 a 30 minutos

Pasado este tiempo, sepueden observar en el tubo 3 fases: una inferior clara que contiene la solución de hidróxido de sodio sobrante junto con la glicerina formada, otra intermedia semisólida que es el jabón formado y una superior lipídica de aceite inalterado.

1.2.2 TINCION:
Disponer en una gradilla 2 dos tubos de ensayo colocando en ambos 2mll de aceite
Añadir a uno de los tubos 4-5gotas de solución alcohólica de SudánIII
Al otro tubo añadir 4-5 gotas de tinta roja
Agitar ambos tubos y dejar reposar
Observar los resultados: en el tubo con Sudán III todo el aceite tiene que aparecer teñido, mientras que el tubo con tinta, ésta se irá al fondo y el aceite no estará teñido.

1.2.3 SOLUBILIDAD:
Poner 2ml de aceite en dos tubos de ensayo
Añadir a uno de ellos 2ml de agua y al otro 2ml de éter u otro disolventeorgánico
Agitar fuertemente ambos tubos y dejar reposar
Observar los resultados: se verá como el aceite se ha disuelto en el éter y, en cambio no lo hace en el agua y el aceite subirá debido a su menor densidad.

2. PROCEDIMIENTOS PRACTICA 5 Y 6

2.2 CELULAS SANGUINEAS.
TURGENCIA Y PLASMOLISIS DE LOS ERITROCITOS
Con la lanceta esterilizada, haga una pequeña incisión en la yema de un dedo.
Tome unamuestra de sangre y distribúyala en tres portaobjetos, agregue luego una gota de diferentes soluciones de NaCl 0,6%, 1,2% y 10% respectivamente
Observe alrededor las gotas de sangre al microscopio en objetivos (4x, 10x y 40x)
Colócala en un portaobjeto limpio y seco, ponga el cubreobjetos y realice la observación correspondiente al microscopio. Compare el aspecto y el tamaño de los eritrocitos,dibújelos
Coloque a la muestra de sangre dos gotas de agua destillada.

Practica 6. Células sanguíneas.

Con la ayuda de una lanceta estéril efectué un pinchazo en el pulpejo del dedo.
Retire co un algodón la primera gota de sangre y la siguiente ponerla en un portaobjetos
Realice el extendido con la ayuda de otra lamina y dejar secar a temperatura ambiente
Poner la lámina con el extendido en...