Venas Abiertas

LABORATORIO DE MICROBIOLOGÍA EXPERIMENTAL
Grupo 02 (10:00 – 13:00 hrs) Semestre 2011-1
Profesores: Rosalba Esquivel-Cote y Hugo A. Hernández Pérez

CALENDARIO DE ACTIVIDADES

Semana 1

UNIDAD
1. BUENAS PRÁCTICAS DE
LABORATORIO

2. TÉCNICAS BÁSICAS DE
MICROBIOLOGÍA

TAREAS

Lunes 9 de Agosto
Miércoles 11 de Agosto
Presentación.
Organización.
Forma
de P1 Bioseguridad. Análisisdel reglamento de
evaluación.
seguridad e higiene.
Recorrido en las instalaciones del Depto de Ejercicio del lavado de manos.
Biología (Medios de cultivo, Cepario, Anexo del
L1B, Sección de Incubación y Esterilización).
P2.1 Uso y cuidado del microscopio de
Demostración del manejo del material
campo claro.
Pedir a Pilar Granada, preparaciones fijas.
Presentación del microscopio.Enfoque.
Observación de preparaciones fijas.
Lectura del manual de higiene y seguridad para Traer letras pequeñas recortadas de periódico o
discutir en clase.
revistas.
MAESTROS: Apartar Sala de Audiovisual.

REPORTES
EXAMENES

Semana 2

UNIDAD
1. BUENAS PRÁCTICAS DE
LABORATORIO
2. TÉCNICAS BÁSICAS DE
MICROBIOLOGÍA

TAREAS

REPORTES
EXAMENES

Lunes 16 de Agosto
Miércoles 18 deAgosto
Reconocimiento de recipientes para desechar
colorantes y vidrios rotos.
P2.2 Preparaciones microbiológicas.
P2.2 Preparaciones microbiológicas.
P2.2.3 Preparaciones fijas.
Revisar el video de Tinción Gram (Carmen),
P2.2.4 Tinción simple.
preguntas de apoyo.
PLÁTICA EN AUDIOVISUAL.
P2.2.5 Tinciones diferenciales (tinción Gram y
Ziehl-Neelsen).
Dar 20 min para organizar material engavetas.
Poner el viernes 20, azúcar al pulque
Pedir pulque para miércoles 18 y lunes 23 (50 Pedir material para instalar columnas de
Winogradsky el miércoles 25 de Agosto.
mL).
Entrega de artículo Bioseguridad.
PEDIR MATERIAL PARA PREPARACIÓN DE
MEDIOS DE CULTIVO

Semana 3

UNIDAD
2. TÉCNICAS BÁSICAS DE
MICROBIOLOGÍA

10. DIVERSIDAD
MICROBIANA EN UN
MICROAMBIENTE
TAREAS

Lunes23 de Agosto
P2.2 Preparaciones microbiológicas.
P2.2.6 Tinción selectiva (tinción de endoespora).
P2.2.7 Tinción negativa (tinción de cápsula).

Miércoles 25 de Agosto
P2.3 Esterilización y preparación de medios
de cultivo.
Preparar medios de cultivo. Esterilización.
Utilizar controles biológicos
10.1
Instalación
de
columnas
de
Winogradsky.

Endoesporas bacterianas y cápsula(cuestionario Traer material para instalar columnas de
y esquemas).
W inogradsky
Entrega artículo columna de Winogradsky.
Traer pulque (50 mL).

REPORTES
EXAMENES
A partir de la siguiente semana, los laboratoristas (L 1A) no proporcionarán el siguiente material:
asas bacteriológicas, gradillas, mecheros, portaobjetos y cubreobjetos

UNIDAD
2. TÉCNICAS BÁSICAS DE
MICROBIOLOGÍA

Semana 43. ESTUDIO DE CULTIVOS
BACTERIANOS PUROS

Lunes 30 de Agosto
Lectura
e
interpretación
de
resultados
(esterilización y preparación de medios).
P2.3 Control de calidad de esterilización,
zona y técnica aséptica.
P3.1 Técnicas de cultivo de bacterias:
Inoculación
de
bacterias
filamentosas
(actinobacterias) y no filamentosas.

4. ESTUDIO MICROSCÓPICO
Y CULTIVO DE HONGOSEXAMENES

Lectura e interpretación de resultados (desarrollo
de bacterias no filamentosas).
P4.1 Técnicas de cultivo de hongos.
Inoculación de hongos (mohos y levaduras).
Incubar a 28°C.
Pedir tarea de aislamiento (entregar el 13 de
Septiembre)

TAREAS

REPORTES

Miércoles 1 de Septiembre
Lectura e interpretación de resultados (control de
calidad de esterilización).

REPORTE 1.Microscopio, preparaciones fijas,
tinciones diferenciales, selectiva y negativa. +
Cuestionario (se revisarán las preguntas al azar)

Semana 5

UNIDAD
2. TÉCNICAS BÁSICAS DE
MICROBIOLOGÍA

Lunes 6 de Septiembre

3. ESTUDIO DE CULTIVOS
BACTERIANOS PUROS
4. ESTUDIO MICROSCÓPICO
Y CULTIVO DE HONGOS
10. DIVERSIDAD
MICROBIANA EN UN
MICROAMBIENTE
TAREAS

Lectura e interpretación de...